Referencias

ISBN

Formato digital
979-13-88349-33-1

Fecha de publicación

25-08-2026

Licencia

D. R. © copyright 2026. Dra. Claudia Yared Michel López, Dr. Gregorio Joya Dávila, Dr. Ulin Antobelli Basilio Cortés, Dr. Daniel Gonzalez Men-doza, Dra. Olivia Tzintzun Camacho, Dr. Dagoberto Durán Hernandez, Dr. Miguel Cabrera Cruz y Dr. Alexis Salazar Navarro.

Todos los contenidos de esta obra se comparten bajo la licencia Creative Commons Atribución/Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0). Esto implica que no está autorizado el uso comercial de la obra original ni de las eventuales obras derivadas, las cuales deberán distribuirse bajo la misma licencia que rige la obra original. No obstante, se permite a terceros compartir el contenido siempre y cuando se reconozca debidamente la autoría y la publicación original en esta editorial.

Alburqueque Andrade, Diana, & Gusqui Mata, Roberto. (2018). Eficacia de fungicidas químicos para el control in vitro de diferentes fitopatógenos en condiciones controladas. Arnaldoa, 25(2), 489498. 
Apodaca-Sánchez, M. A. Barreras-Soto, M. A., Cortez-Mondaca, E., y Quintero-Benítez, J. A. 2008. Enfermedades del Tomate de Cascara en Sinaloa. INIFAP-CIRNO. Campo Experimental Valle del Fuerte. Folleto Técnico No. 31. Los Mochis, Sinaloa, México. 33p.
 Ayala-Armenta, Q. A, Cortez Mondaca, E., Apodaca Sánchez, M. Á., Leal León, VM, Valenzuela Escoboza, FA, y Palacios Mondaca, CA (2015). Efectividad de fungicidas convencionales y biorracionales sobre Sclerotinia sclerotiorum in vitro. Revista mexicana de ciencias agrícolas , 6 (SPE11), 2149-2156.
Ayala-Armenta, Q. A., Fuentes, L. A. P., Peña, H. B., Pedraza, J. M. T., Escoboza, F. A. V., e Islas, J. D. R. R. (2024). Cultivares de tomatillo susceptibles a la marchitez en Sinaloa. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 15(1), 1
Balzarini M.G., Gonzalez L., Tablada M., Casanoves F., Di Rienzo J.A., Robledo C.W. (2008). Infostat. Manual del Usuario, Editorial Brujas, Córdoba, Argentina.
Ceballos-Chávez, Á. R., López-Valenzuela, B. E., Valenzuela-Escoboza, F. A., Ayala-Armenta, Q. A., Lujan-Holguin, R., y Márquez Lujan, H. A. (2024). Identificación y evaluación antagónica in vitro de cepas de Trichoderma spp. nativas contra patógenos del duraznero. Revista del Museo Argentino de Ciencias Naturales, 26(2), 109-120.
González-Pérez, J. E., y Guerrero-Beltrán, J. Á. (2021). Tomatillo or husk tomato (Physalis philadelphica and Physalis ixocarpa): A review. Scientia Horticulturae, 288, 110306.
Juárez, JAO (2016). Evaluación de Bacillus spp. en el antagonismo de fitopatógenos asociados a la secadera en tomate de cáscara, Physalis ixocarpa.
López-Valenzuela, B. E., Armenta-Bojórquez, A. D., Hernández-Verdugo, S., Apodaca-Sánchez, M. A., Samaniego-Gaxiola, J. A., Leyva-Madrigal, K. Y., & Valdez-Ortiz, A. (2015). Selección in vitro e identificación de aislados de Trichoderma spp. y Bacillus spp. nativos para el control de Phymatotrichopsis omnívora. ITEA, 111(4), 310-325.
Sánchez, M. A. A., Soto, M. A. B., Mondaca, E. C., y  Benítez, J. A. Q. Enfermedades del Tomate de Cáscara en Sinaloa. 
Yossen, Viviana E. y Conles, Martha Y. (2014). Eficacia de fungicidas utilizados in vitro para el control de Fusarium oxysporum y F. proliferatum, agentes causales del marchitamiento del orégano en Argentina. Revista industrial y agrícola de Tucumán, 91 (1), 19-25. Recuperado el 26 de julio de 2024, de           http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S185130182014000100003&lng=es&tlng=en
Abdelmoteleb, A., y González Mendoza, D. (2020). Isolation and identification of phosphate solubilizing Bacillus spp. from Tamarix ramosissima rhizosphere and their effect on growth of Phaseolus vulgaris under salinity stress. Geomicrobiology Journal, 37(10), 901-908.
Amri, M., Rjeibi, M. R., Gatrouni, M., Mateus, D. M., Asses, N., Pinho, H. J., y Abbes, C. (2023). Isolation, identification, and characterization of phosphate-solubilizing bacteria from Tunisian soils.       
Dey, G., Banerjee, P., Sharma, R. K., Maity, J. P., Etesami, H., Shaw, A. K., Huang, Y. H., Huang, H. B. y Chen, C. Y. (2021). Management of phosphorus in salinity-stressed agriculture for sustainable crop production by salt-tolerant phosphate-solubilizing bacteria—A review. Agronomy, 11(8), 1552.
Guardiola Márquez, C. E., Santos Ramírez, M. T., Figueroa Montes, M. L., Valencia de Los Cobos, E. O., Stamatis Félix, I. J., Navarro López, D. E., y Jacobo Velázquez, D. A. (2023). Identification and characterization of beneficial soil microbial strains for the formulation of biofertilizers based on native plant growth-promoting microorganisms isolated from northern Mexico. Plants, 12(18), 3262.
Joshi, S., Gangola, S., Jaggi, V., y Sahgal, M. (2023). Functional characterization and molecular fingerprinting of potential phosphate solubilizing bacterial candidates from Shisham rhizosphere. Scientific Reports, 13(1), 7003.
Lapsansky, E. R., Milroy, A. M., Andales, M. J., y Vivanco, J. M. (2016). Soil memory as a potential mechanism for encouraging sustainable plant health and productivity. Current Opinion in Biotechnology, 38, 137-142.
Li, Q., Li, Q., Yin, X., Jia, Y., Yang, K., Song, J., Che, Y., Li, K., Wen, Z., Gu, X. & Yang, W. (2024). Construction of Bacillus–Pseudomonas   Synthetic Communities and Development of Bio-Nursery Substrates. Agronomy, 14(9), 2179.
Mohamed, A. E., Nessim, M. G., Abou-El-Seoud, I. I., Darwish, K. M., y Shamseldin, A. (2019). Isolation and selection of highly effective phosphate solubilizing bacterial strains to promote wheat growth in Egyptian calcareous soils. Bulletin of the National Research Centre, 43(1), 203.
Wang, X. L., Qiu, S. Y., Zhou, S. Q., Xu, Z. H., y Liu, X. T. (2023). Phosphate-solubilizing capacity of Paecilomyces lilacinus PSF7 and optimization using response surface methodology.     Microorganisms, 11(2), 454.
Bakki, M., Ait El Maati, A., Oufdou, K., & Filali-Maltouf, A. (2024). Phosphate solubilization and plant growth-promoting potential of rhizobacteria isolated from tomato rhizosphere in the Souss-Massa region, Morocco. Rhizosphere, 29, 100684.
Bric, J. M., Bostock, R. M., & Silverstone, S. E. (1991). Rapid in situ assay for indoleacetic acid production by bacteria immobilized on a nitrocellulose membrane. Applied and Environmental Microbiology, 57(2), 535–538.
da Silva, E., et al. (2018). Evaluation of diazotrophic bacteria from rice varieties used in Rio Grande do Sul, Brazil. African Journal of Agricultural Research, 13(19), 1029–1035.
González, A., & Aranda, E. (2025). Identification and production of indole-3-acetic acid by bacteria isolated from eco-enzymes. ResearchGate.
Haskett, T. L., Tkacz, A., Poole, P. S., & Ettema, T. J. G. (2021). Engineering rhizobacteria for sustainable agriculture. The ISME Journal, 15(4), 949–964. https://doi.org/10.1038/s41396-020-00835-4
Katiyar, D., Hemantaranjan, A., & Singh, B. (2016). Rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal: una herramienta eficaz para la promoción agrícola. Advances in Plants & Agriculture Research, 4, 426–434.
Lara, C., Sanes, S. C., & Oviedo, L. E. (2013). Impacto de bacterias nativas solubilizadoras de fosfato en el crecimiento y desarrollo de plantas de rábano (Raphanus sativus L.). Biotecnologia Aplicada, 30(4), 271–279.
Mantilla, C. L., Anaya, M. V., & Zumaqué, L. E. O. (2007). Bacterias fijadoras asimbióticas de nitrógeno de la zona agrícola de San Carlos. Revista Colombiana de Biotecnología, 9(2), 6–14.
Qiao, C. C., Wang, T. T., & Wang, R. F. (2017). Screening of high-efficiency phosphate-solubilizing bacteria and its growth promoting effect. J. Nanjing Agric. Univ., 40(4), 664-670.
Quishpe, M. F. P., Parra, M. M. G., García, M. E. M., & Arias, D. R. (2021). Evaluación agronómica de bacterias fijadoras de nitrógeno aisladas de suelos andinos en plántulas de lechuga y tomate. Investigación Agraria, 23(1), 47–52.
Ratnaningsih, H. R., Noviana, Z., Dewi, T. K., Loekito, S., Wiyono, S., Gafur, A., & Antonius, S. (2023). Bacterias productoras de desaminasas IAA y ACC aisladas de la rizosfera de plantas de piña cultivadas bajo diferentes tipos de estrés abiótico y biótico. Heliyon, 9(6), e12345. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e12345
Rodríguez-Gámez, O., Aguilera-Rodríguez, I., & Pérez-Silva, R. M. (2013). Adecuación de un micrométodo colorimétrico para la cuantificación de fósforo soluble en cultivos microbianos. Revista Cubana de Química, 25(1), 3-8.
Sánchez López, Gómez-vargas, Garrido Rubiano. (2012). Inoculación con bacterias promotoras de crecimiento vegetal en tomate bajo condiciones de invernadero. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas.;3(7): 1401-15.
SAS Institute Inc. (2002). The SAS system for windows version 9.0 SAS Institute Inc. Cary, North Carolina, USA
Tedesco, M. J., Gianello, C., Bissani, C. A., Bohnen, H., & Volkweiss, S. J. (1995). Análises de solo, plantas e outros materiais (Vol. 5, p. 174). Porto Alegre, Brasil: Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS).
Chaves, M. M., Flexas, J., & Pinheiro, C. (2010). Grapevine under deficit irrigation: Hints from physiological and molecular data. Annals of Botany, 105(5), 661–676. https://doi.org/10.1093/aob/mcq030
Cogato, A., Jewan, S. Y. Y., Wu, L., Marinello, F., Meggio, F., & Sozzi, M. (2022). Water stress impacts on grapevines (Vitis vinifera L.) in hot environments: Physiological and spectral responses. Agronomy, 12(8), 1819. https://doi.org/10.3390/agronomy12081819
Gambetta, G. A., Martínez De Toda, F., Alonso, M., et al. (2020). The physiology of drought stress in grapevine. International Journal of Molecular Sciences, 21(12), 4014. https://doi.org/10.3390/ijms21124014
Hasanuzzaman, M., Nahar, K., Alam, M. M., Bhowmik, P. C., Hossain, M. S., Rahman, M. M., & Fujita, M. (2021). Biostimulants for the regulation of reactive oxygen species metabolism in plants under abiotic stress. Antioxidants, 10(2), 243. https://doi.org/10.3390/antiox10020243
Intrigliolo, D. S., & Castel, J. R. (2006). Vine and berry response to deficit irrigation in Tempranillo grapevine. Agricultural Water Management, 83(1–2), 113–125. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2005.11.002
Lovìsolo, C., Perrone, I., Carra, A., Ferrandino, A., Flexas, J., Medrano, H., & Schubert, A. (2010). Grapevine adaptations to water stress: New perspectives about soil/plant interactions. Functional Plant Biology, 37(2), 98–116. https://doi.org/10.1071/FP09191
Martínez-Lorente, S. E., He, Y., Bresó, S., et al. (2024). Higher plant-derived biostimulants: Mechanisms of action and their role in mitigating plant abiotic stress. Plants, 13(6), 1105. https://doi.org/10.3390/plants13061105
Patono, D. L., Belmonte, M. F., & Parker, A. M. (2022). Photosynthetic recovery in drought-rehydrated grapevines is associated with high demand from the sinks, maximizing fruit-oriented performance. Plants, 11(12), 1709. https://doi.org/10.3390/plants11121709
SIAP. (2023). Anuario estadístico de la producción agrícola. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera, Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. https://www.gob.mx/siap
Williams, L. E., Baeza, P., & Vaughn, P. (2012). Midday measurements of leaf water potential and stomatal conductance are highly correlated with daily water use of Thompson Seedless grapevines. Irrigation Science, 30(3), 201–212. https://doi.org/10.1007/s00271-011-0276-2
Alcántar, G. G. y Sandoval, V. M. 1999. Manual de análisis químico de tejido vegetal: guía de muestreo, preparación, análisis e interpretación. Publicación especial 10. Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo. Chapingo, México. 156p.
Aguilar, I. D., Saavedra, M. L., González, G. A., Alarcón, A. V., Cossio, F. G., y González, R. C. (2001). Acumulaciones tóxicas de níquel en el crecimiento y la nutrición de trigo. Terra Latinoamericana, 19(3), 199-209.
Díaz, L. J. Á. (2024). Producción de lechuga por el método hidropónico: evaluación económica y perspectivas. Año 2023. Ciencias Económicas ISSN-2788-6425, 5(9), 33-44.
Herrera, A. L. (1999). Manejo de la solución nutritiva en la producción de tomate en hidroponía. Terra latinoamericana, 17(3), 221-229.
Loconsole, D., Cocetta, G., Santoro, P. and Ferrante, A. 2019. Optimization of LED lighting and quality evaluation of Romaine lettuce grown in an innovative indoor cultivation system. Sustainability 11(3): 841. https://doi.org/10.3390/su11030841.
Lara Viveros, F. M; Landero Valenzuela, N; Aguado Rodríguez, G. J; Ehsan, M., Moreno Hernández, V. y Ventura Maza, A.  (2018). Utilización del ion amonio en el desarrollo de plántulas de estevia (Stevia rebaudiana) en condiones de hidroponía. Interciencia, 43(2), 106-110.Recuperado de https://www.redalyc.org/journal/339/33956916007/33 956916007.pdf.
Lara-Izaguirre, A., Rojas-Velázquez, A. N., Romero-Méndez, M. J., Ramírez-Tobías, H. M., Cruz-Crespo, E., Alcalá-Jáuregui, J. A., y Loredo-Ostí, C. 2019. Crecimiento y acumulación de NO3- en lechuga hidropónica con relaciones nitrato/amonio en dos estaciones de cultivo. Revista Fitotecnia Mexicana 42(1): 21-29. https://doi.org/10.35196/rfm.2019.1.21.
Morales-Morales, E. J., Rubí-Arriaga, M., López-Sandoval, J. A., Martínez-Campos, Á. R., y Morales-Rosales, E. J. (2019). Urea (NBPT) una alternativa en la fertilización nitrogenada de cultivos anuales. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 10(8), 1875-1886.
Motsara, M. R. and Roy, R. N. (2008). Guide to laboratory establishment for plant nutrient analysis. FAO Fertilizer and Plant Nutrition Bulletin 19. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome, Italy. 220p.
Muñiz Ugarte, O; Rodríguez Alfaro, M; Montero Álvarez, A., Estévez Álvarez, J; de Aguiar Accioly, A. M; y Araujo Do Nascimento, C. W. (2015). El níquel en suelos y plantas de Cuba. Cultivos Tropicales, 36, 25-33.
Rodríguez, F. H. y Rodríguez, A. J. (2015). Métodos de análisis de suelos y plantas: criterios de interpretación. Editorial Trillas. 288p.
Rueda, V. P., Duque, P. A., y Ariza, L. O. (2015). Adenocarcinoma gastrico en paciente con exposición constante a nitratos y nitratos en su alimentación. Revista salud, historia y sanidad., 10(2), 58-66.
StatSoft, inc. 2004. STATISTICA (data analysis software system), version 7. www.statsoft.com.
Biehler, E., Mayer, F., Hoffmann, L., Krause, E., y Bohn, T. (2010). Comparison of 3 spectrophotometric methods for carotenoid determination in frequently consumed fruits and vegetables. Journal of food science, 75(1), C55-C61.
Inskeep, W. P., y Bloom, P. R. (1985). Extinction Coefficients of Chlorophyll a and b in N,N -Dimethylformamide and 80% Acetone . Plant Physiology, 77(2), 483–485.
Singh, J., y Singh, V. (2022). Efficient management of fertilizer nitrogen in spring maize using SPAD chlorophyll meter and GreenSeeker optical sensor. Agricultural Research Journal, 59(5).  Ramjattan, R., & Umaharan, P. (2021). Interrelationships between yield and its components in hot pepper (Capsicum chinense Jacq.). Scientia Horticulturae, 287, 110254.
Zhang, K., Li, W., Li, H., Luo, Y., Li, Z., Wang, X., & Chen, X. (2023). A leaf‐patchable reflectance meter for in situ continuous monitoring of chlorophyll content. Advanced Science, 10(35), 2305552.
Zhang, X., Ma, X., Wang, S., Liu, S., & Shi, S. (2024). Physiological and genetic aspects of resistance to abiotic stresses in Capsicum Species. Plants, 13(21), 3013.
Gitelson, A. A., Gritz, Y., & Merzlyak, M. N. (2003). Relationships between leaf chlorophyll content and spectral reflectance and algorithms for non-destructive chlorophyll assessment in higher plant leaves. Journal of plant physiology, 160(3), 271-282.
Ling, Q., Huang, W., & Jarvis, P. (2011). Use of a SPAD-502 meter to measure leaf chlorophyll concentration in Arabidopsis thaliana. Photosynthesis research, 107(2), 209-214. https://doi.org/10.1007/s11120-010-9606-0
Gitelson, A. A., Merzlyak, M. N., & Chivkunova, O. B. (2001). Optical properties and nondestructive estimation of anthocyanin content in plant leaves. Photochemistry and photobiology, 74(1), 38-45. https://doi.org/10.1562/0031-8655(2001)0740038OPANEO2.0.CO2
Haboudane, D., Miller, J. R., Pattey, E., Zarco-Tejada, P. J., & Strachan, I. B. (2004). Hyperspectral vegetation indices and novel algorithms for predicting green LAI of crop canopies: Modeling and validation in the context of precision agriculture. Remote sensing of environment, 90(3), 337-352. https://doi.org/10.1016/j.rse.2003.12.013
De Costa, D.M., and Erabadupitiya, H.R.U.T. 2005. An integrated method to control postharvest diseases of banana using a member of the Burkholderia cepacia complex. Postharvest Biology and Technology 36:31-39. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0925521404002662
Oliveira, C.A., V. Alves, I. Marriel, E. Gomes, M. Scotti, N.P. Carneiro, C.T. Guimaraes, R.E. Schaffert, y N. Sá. 2009. Phosphate solubilizing microorganisms isolated from rhizosphere of maize cultivated in an oxisol of the Brazilian Cerrado Biome. Soil Biol. Biochem. 41:1782-1787. https://rootbiome.tamu.edu/wp-content/uploads/sites/38/2015/06/2015-Oliveira-et-al.-phosphate-solubilizing-microbes-Soil-Biol-Biochem.pdf
Rios-Velasco C, Caro-Cisneros JN, Berlanga-Reyes DI, Ruíz-Cisneros MF, Ornelas-Paz JJ, Salas-Marina MA, Villalobos-Pérez E y Guerrero-Prieto VM. 2016. Identification and antagonistic activity in vitro af Bacillus spp. and Trichoderma spp. isolates againts common phytopathogenic fungi. Revista Mexicana de Fitopatología 34: 84-99. DOI: 10.18781/R.MEX.FIT.1507-1 https://www.scielo.org.mx/pdf/rmfi/v34n1/2007-8080-rmfi-34-01-00085-es.pdf
DGSIAP (2024),  Arándano            Azul       (BLUEBERRY),    Disponible          en: https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Sudhasus S. P. 1998. Interacitions o fan acid tolerant strain of phosphate solubilizing bacteria with a few acid tolerant crops. Plant and Soil 2. 169-177. https://doi.org/10.1023/A:1004318814385
Soto J., Alcaraz M. 2022. Bacterias solubilizadoras de fosforo inorganico aislados de la rizosfera de Coffea americana in Roja-Peru. Ciencia e investigación 2022 25(1):11-16. DOI: https://doi.org/10.15381/ci.v25i1.23466
Ali, M. F., Ma, L., Sohail, S., Zulfiqar, U., Hussain, T., Lin, X., & Wang, D. (2025). Zinc Biofortification in Cereal Crops: Overview and Prospects. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 25, 4260–4294. https://doi.org/10.1007/s42729-025-02396-x
Cakmak, I. (2008). Enrichment of cereal grains with zinc: agronomic or genetic biofortification. Plant and Soil, 302(1-2), 1-17. https://doi.org/10.1007/s11104-007-9466-3
Escobosa-García, I., Vázquez-Medina, M. M., Samaniego-Gámez, B. Y., Valle-Gough, R. E., Vázquez-Angulo, J. C., & Núñez-Ramírez, F. (2022). Efecto del acolchado en repollo cultivado en el Valle de Mexicali. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 13(SPE28), 197-206. https://doi.org/10.29312/remexca.v13i28.3275
Fanzo, J., & Davis, C. (2021). Global food systems, diets, and nutrition. Cham: Springer International Publishing. https://doi.org/10.1007/978-3-030-72763-5
Graham, R. D., Welch, R. M., Saunders, D. A., Ortiz‐Monasterio, I., Bouis, H. E., Bonierbale, M., … & Twomlow, S. (2007). Nutritious subsistence food systems. Advances in agronomy, 92, 1-74. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(04)92001-9
Núñez-Ramírez, F., Grijalva-Contreras, R. L., Macías-Duarte, R., Samaniego-Gámez, B. Y., Escobosa-García, I., Grimaldo-Juárez, O., & Suárez-Hernández, Á. M. (2022). Incorporación de paja al suelo, inoculación con zinc a la semilla y fertilización con nitrógeno en trigo cultivado bajo condiciones de suelo salino. Terra Latinoamericana, 40. https://doi.org/10.28940/terra.v40i0.1010
Oliveira, V. D. S., Marchiori, J. J. D. P., Ferreira, L. D. S., Boone, G. T. F., Pereira, L. L. D. S., Carriço, E., & Bolsoni, E. Z. (2023). The nutrient zinc in soil and plant: a review. International Journal of Plant & Soil Science, 35(4), 25-30. https://doi.org/10.9734/ijpss/2023/v35i42794
Vera, L. R. O., Alvarez, J. W. R., Blanco, A. N. G., Rojas, C. A. L., & Fois, D. A. F. (2021). Fertilización con zinc en trigo, maíz y sésamo en suelos de diferentes texturas. Investigación Agraria, 23(2), 53-62.
Zulfiqar, F. (2021). Effect of seed priming on horticultural crops. Scientia horticulturae, 286, 110197. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2021.110197.
Álvarez-Hernández, J. C.; Tapia-Vargas, L. M.; Hernández-Aragón, L.; Tavitas-Fuentes, L., & Apaez-Barrios, M. (2022). Potencial productivo del arroz ‘Lombardía FLAR 13’ genotipo de grano largo y delgado de la zona arrocera de Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 13(6), 1117-1127. https://doi.org/10.29312/remexca.v13i6.3037
Barrios-Gómez, E. J.; Rodríguez-Morelos, V. H.; Hernández-Aragón, L.; Tavitas-Fuentes, L.; Hernández-Pérez, A.; Tapia-Vargas, L. M., y Pinzón-García, J. M. (2016). Evaluación de líneas de arroz de grano delgado para riego en México. Interciencia, 41(7), 476-481. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=33946267006
Basha, S. J., & Sarma, S. R. (2017). Yield and water use efficiency of rice (Oryza sativa L.) relative to scheduling of irrigations. Annals of Plant Sciences, 6.02, 1563-1567. https://doi.org/10.21746/aps.2017.02.005
Bernier, J.; Atlin, G. N.; Serraj, R.: Kumar, A., & Spaner, D. (2008). Breeding upland rice for drought resistance. Journal of the Science of Food and Agriculture, 88(6), 927-939. https://doi.org/10.1002/jsfa.3153
Bouman, B. A. M.; Feng, L.; Tuong, T. P.; Lu, G.; Wang, H., & Feng, Y. (2007). Exploring options to grow rice using less water in northern China using a modelling approach II. Quantifying yield, water balance components, and water productivity. Agricultural Water Management, 88(1–3), 23-33. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2006.10.005
Carracelas, G.; Hornbuckle, J.; Rosas, J., & Roel, A. (2019). Irrigation management strategies to increase water productivity in Oryza sativa (rice) in Uruguay. Agricultural Water Management, 222, 161-172. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2019.05.049
Coras-Merino, P. M. 1999. Propiedades físicas del suelo relacionadas con el riego. Chapingo, México: Universidad Autónoma Chapingo.
Dunn, B. W., & Gaydon, D. S. (2011). Rice growth, yield and water productivity responses to irrigation scheduling prior to the delayed application of continuous flooding in south-east Australia’’. Agricultural Water Management, 98(12), 1799-1807. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2011.07.004
Fideicomisos Instituidos en Relación con la Agricultura (FIRA). 2025. Agrocostos, cultivo arroz, ciclo Otoño-Invierno 2024-2025, Nayarit. Consultado: Agosto 2025, https://www.fira.gob.mx/Nd/Agrocostos.jsp
Hattori, Y.; Nagai, K., & Ashikari, M. (2011). Rice growth adapting to deep water. Current Opinion in Plant Biology, 14(1), 100-105. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2010.09.008
Polón, R.; Castro, R.; Parra, Y.; López, E., y Mesa, S. (2000). Effect of irrigation regime on water layer reposition in rice crop (Oryza sativa L.). Cultivos Tropicales, 21(4), 35-37. Recuperado de: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=193230160007
Saxton, K. E., & Rawls, W. J. (2006). Soil water characteristic estimates by texture and organic matter for hydrologic solutions. Soil Science Society of America Journal, 70, 1569-1578. https://doi.org/10.2136/sssaj2005.0117
Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). (2002). Norma Oficial Mexicana NOM-021-SEMARNAT-2000 que establece las especificaciones de fertilidad, salinidad y clasificación de suelos, estudio, muestreo y análisis. Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales. Diario Oficial de la Federación. México. Recuperado de https://www.ordenjuridico.gob.mx/Documentos/Federal/wo69255.pdf
Tuong, P.; Bouman, B. A. M., & Mortimer, M. (2005). More rice, less water-integrated approaches for increasing water productivity in irrigated rice-based systems in Asia. Plant Production Science, 8(3), 231–241. https://doi.org/10.1626/pps.8.231
El-Rehim, H. A., Hegazy, E. A., & Abd El-Mohdy, H. L. (2004). Radiation synthesis of hydrogels to enhance sandy soils water retention and increase performance of the agricultural process. Journal of Applied Polymer Science, 93(3), 1360–1371. https://doi.org/10.1002/app.20576
García, E. (2010). Modificaciones al sistema de clasificación climática de Köppen (5.ª ed.). Instituto de Geografía, UNAM. https://www.inegi.org.mx
Gehring, J. M., & Lewis, A. J. (1980). Effect of hydrogel on wilting and moisture stress of bedding plants. Journal of the American Society for Horticultural Science, 105(4), 511–513. https://doi.org/10.21273/JASHS.105.4.511
INEGI. (2023). Información geográfica de México. Instituto Nacional de Estadística y Geografía. https://www.inegi.org.mx
López, R., & Hernández, P. (2018). Métodos de aplicación de polímeros superabsorbentes en la agricultura. Journal of Agricultural Research, 45(2), 67–79.
Martínez, F., & Gómez, L. (2022). Técnicas de riego y manejo del agua en cultivos de sorgo. Agronomía Mesoamericana, 33(1), 23–35. https://doi.org/10.15517/am.v33i1.47612
Rodríguez, A., & Martínez, C. (2021). Calibración de equipos de medición de humedad en suelos agrícolas. Tecnología y Ciencias del Agua, 12(4), 45–58. https://doi.org/10.24850/j-tyca-2021-04-04
Solís, F., et al. (2020). Evaluation of four doses of potassium polyacrylate in the development of the coffee crop (Coffea arabica L.) and in the conservation of available moisture for the plant in the soil. Agrociencia, 54(6), 765–780.
Yazdani, F., Allahdadi, I., & Akbari, G. A. (2007). Impact of superabsorbent polymer on yield and growth analysis of soybean (Glycine max L.) under drought stress condition. Pakistan Journal of Biological Sciences, 10(23), 4190–4196. https://doi.org/10.3923/pjbs.2007.4190.4196
Zhang, M., Wang, H., Yang, Z., Wang, L., & Chen, W. (2015). Effects of superabsorbent polymers on the physical and chemical properties of soil following different wetting and drying cycles. PLOS ONE, 10(11), e0141543. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0141543
Adrianzen G. V. M-. 2017. Uso del agua de mar para el desarrollo de un cultivo de acelga (Beta vulgaris var. cicla) mediante el riego por capilaridad en un huerto escalonado. Tesis de Licenciatura. Facultad de Ingeniería. Universidad César Vallejo. Lima Perú.
Aladyr. 2019. Desalinización de agua de mar para agricultura en contexto. https://aladyr.net/wp-content/uploads/2020/03/costos_desalacionfinal-1.pdf
Aquamaris..2015.Agricultura con agua de mar. https://elaguademar.wordpress.com/category/agricultura-con-agua-de- mar/page/3/
Ecoembes,2023. Agua de mar para regar las cosechas del futuro. https://ecoembesdudasreciclaje.es/agricultura-con-agua-de-mar/
FAO, SF. The importance of sustainable water management CONSULTADO 22/SEP. Disponible:https://www.fao.org/land-water/water/es.
Fernández R. 2019. Del mar al campo: El potencial del agua de mar para el riego de cultivos. https://agroecologysl.com/del-mar-al-campo-el-potencial-del-agua-de-mar-para-el-riego-de-cultivos
Hu X, Tanaka A, Tanaka R. 2013. Simple extraction methods that prevent the artifactual conversión of chlorophyllide during pigment isolation from leaf samples. Plant Methods.9:19 http://www.plantmethods.com/content/9/1/19
Metternicht G.I., Zinck J.A. 2003. Remote sensing of soil salinity: potentials and constraints. Remote Sens. Environ. 2003; 85:1–20.
Turhan A., Kuscu H., Ozmen N. Sitki S. M., and Demir.A. O. (2014). Effect of different concentrations of diluted seawater on yield and quality of lettuce.  Chilean journal of agricultural research. On-line version ISSN 0718-5839. Consultado el 3 /08/25.
Universidad Católica del Norte.2017. Ingenieras logran producir hortalizas con agua de mar sin desalar. https://www.noticias.ucn.cl/noticias/ingenieras-logran-producir-hortalizas-con-agua-de-mar-sin-desalar/

 
Addinsoft (2023). XLSTAT statistical and analysis solution. Boston, USA. https://www.xlstat.com.
Angulo-Aguilar, S. D., & Solorzano-Quintana, M. (2023). Diseño de un sistema de riego y fertirriego por goteo para cultivo de cebolla (Allium Cepa) y papa (Solanum tuberosum) bajo los requerimientos de humedad del suelo determinados con sensores en Finca La Laguna, Tierra Blanca, Cartago.
Estrada-Prado, W., Lescay-Batista, E., Álvarez-Fonseca, A., & Maceo-Ramos, Y. C. (2015). Niveles de humedad en el suelo en la producción de bulbos de cebolla. Agronomía Mesoamericana, 26(1), 112-117.
FAOSTAT (Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura Dirección de Estadística). 2022. Producción/Culivos/Cebolla Seca. Disponible en: http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC, consultado en enero de 2021.
Khanzada, A. N. A. B., Ansari, M. A. , Chang, B.H., Rajput, A. M. M. A. R. A., Magsi, F. H. y Ali, U. M. E. D. 2016. Evaluar el momento adecuado y dividir las tasas de aplicación de nitrógeno para mejorar el crecimiento y el rendimiento del girasol. Euroacademia. Res, 4 (7), 5986-6007.
Servicio de información agroalimentaria y pesquera (SIAP), 2023. Cierre de la producción agrícola por cultivo. En Sistema de información agroalimentaria de consulta (SIACON-NG).
Tambo, D. (2016). Efecto de niveles de biol bovino en dos variedades de cebolla (Allium cepa L.) con riego complementario, en la Estación Experimental Choquenaira, Viacha–La Paz. Viacha–La Paz.
Tiscornia, R. (2018). Cultivo de hortalizas terrestres. ALBATROS 15(6): 68-79.
United States Department of Agriculture (USDA). 1987. Soil Mechanics Level 1 Module 3 USDA Soil Textural Classification Study Guide. USDA Soil Conservation Service, Washington DC.
Zarza Silva, HA, Enciso Garay, CR y González Ferreira, FN (2018). Efectos de la fecha de trasplante sobre el rendimiento de cultivares de cebolla en Paraguay. Horticultura Argentina/Horticultura Argentina , 37 (93).
Zhao, C. X., Jia, L. H., Wang, Y. F., Wang, M. L y McGiffen Jr, M. E. (2015). Efectos de diferentes texturas del suelo en el crecimiento y desarrollo del maní. Comunicaciones en ciencia del suelo y análisis de plantas, 46 (18), 2249-2257.
Arias-Hernández, L.A.; Juaristi-Videgaray, E.; Mares-Martínez, H.E.; Solís-Silván, R.; Maldonado-Santoyo, M.; Calderón-Vega, F.; Valdés-Vázquez, J.F.; Delgadillo-Ruiz, E. (2024). Valoración de acolchados ecoplásticos utilizados para reducir la evaporación en suelos agrícolas. Cienc. Nicolaita, 91, 1–9. https://doi:10.35830/cn.vi91.757
Demo AH and Asefa Bogale G (2024) Enhancing crop yield and conserving soil moisture through mulching practices in dryland agriculture. Front. Agron. 6:1361697. doi: 10.3389/fagro.2024.1361697
Devadarshini, D., Samal, S., Jena, P. K., & Samantaray, D. (2024). 11 Recent Trends in. Advanced Green Technology for Environmental Sustainability and Circular Economy, 196. https://doi.org/10.1201/9781003517108-11
Gatkal, N. R., Nalawade, S. M., Sahni, R. K., Walunj, A. A., Kadam, P. B., Bhanage, G. B., & Datta, R. (2024). Present trends, sustainable strategies and energy potentials of crop residue management in India: A review. Heliyon, 10(21). https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e39815.
Iqbal, R., Raza, M. A. S., Valipour, M., Saleem, M. F., Zaheer, M. S., Ahmad, S., … & Nazar, M. A. (2020). Potential agricultural and environmental benefits of mulches—a review. Bulletin of the National Research Centre, 44(1), 75. https://doi.org/10.1186/s42269-020-00290-3.
Zalai, M., Bujtás, O., Sárospataki, M., & Dorner, Z. (2025). Grassy and Herbaceous Interrow Cover Crops in European Vineyards: A Review of Their Short-Term Effects on Water Management and Regulating Ecosystem Services. Land, 14(8), 1526. https://doi.org/10.3390/land14081526.
Allen, R.G., Pereira, L.S., Raes, D. y Smith, M. (2006). Evapotranspiración del cultivo. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO). Roma, Italia. 56, 1-79.
Campos-Rodríguez, K.M. y Martínez-Prats, G. (2024). Future scenarios for water management in Mexico: integrated and sustainable approaches. RevisTAP, 3(1): 437-444. https://revistap.ejeutap.edu.co/index.php/utap/article/view/139
Darko, R.O., Wadie, P.C., Afutu, E., Kissi, N.A., Ackah, F.K., Hanyabui, E. (2025). Impact of deficit irrigation on sweet pepper (Capsicum annuum var. Simbard) performance: assessing growth, yield, and water use efficiency under a four-day Interval irrigation. Egyptian Journal of Agricultural Research, 103 (2), 227-243. https://doi.org/10.21608/EJAR.2025.360782.1642
Hernández-Sánchez, L., Medina-Rivas, C.M. y Gómez-Reyes, E. (2023). Las sequías en la región de Sinaloa y su vínculo con el fenómeno de El Niño. Capítulo 7 en Sequía en México. Universidad Autónoma Metropolitana. 254 pp. https://agua.org.mx/wp-content/uploads/2023/12/Red-AgUAM-Sequia.pdf
Jaramillo, J., Reinoso, M., González, A., Cordero, J. (2025). Estimación del coeficiente de cultivo (Kc) para el cultivo de pimiento mediante lisímetro volumétrico en la zona productiva del sistema de riego Campana-Malacatos. Bosques Latitud Cero, 15(1), 68-80. https://doi.org/10.54753/blc.v15i1.2366
López-Avendaño, J.E., Díaz-Valdés, T., Watts-Thorp, Ch., Rodríguez, J.C., Castellanos-Villegas, A.E., Partida-Ruvalcaba, L., Velázquez-Alcaraz, T.J. (2015). Evapotranspiración y coeficientes de cultivo de chile bell en el Valle de Culiacán, México. Terra Latinoamericana, 33(3), 209-219.
Mohammed, S. y Hussen, A. (2023). Influence of deficit irrigation levels on agronomic performance of pepper (Capsicum annuum L.) under drip at alage, Central rift Valley of Ethiopia. PLOS ONE, 18(11): e0280639. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0280639
 Bartok JR, John W.  2018. Maintaining hydroponic solution temperature. Greenhouse Management.
 
Guerrero, E. M., Revelo, J. C., Benavides, O., Chaves, G., & Moncayo, C. Á. 2014. Evaluación de sustratos en un cultivo de lechuga bajo un sistema hidropónico en el municipio de Pasto. Revista de Ciencias Agrícolas, 31(1) 3-16.
 
Levine Christopher P, Hayashi Sota, Ohmori Yoshihiro, Kusano Miyako, Kobayashi Makoto, Nishizawa Tomoko, Kurimoto Ikusaburo, Kawabata Saneyuki, Yamori Wataru. 2023. Controlling root zone temperature improves plant growth and pigments in hydroponic lettuce, Annals of Botany, 132(3). 455–470. https://doi.org/10.1093/aob/mcad127
 
Moccio, M., Dunn, BL, Kaur, A., Fontanier, C. y Zhang, L. 2024. Efectos de la temperatura de la      zona radicular de la lechuga hidropónica en el crecimiento de la planta, la absorción de nutrientes y el contenido de vitamina A. HortScience, 59 (2) 255–257. https://doi.org/10.21273/HORTSCI17560-23
 
Thakulla, D., Dunn, B., Hu, B., Goad, C., Maness, N. 2021. Nutrient Solution Temperature Affects Growth and ◦Brix Parameters of Seventeen Lettuce Cultivars Grown in an NFT Hydroponic System. Horticulturae. 321(7). https://doi.org/ 10.3390/horticulturae7090321
Conagua. (2022). Precipitación por Entidad Federativa y Nacional. Comisión Nacional del Agua. Recuperado el 4 de marzo de 2025, de https://smn.conagua.gob.mx/tools/DATA/Climatolog%C3%ADa/Pron%C3%B3stico%20clim%C3%A1tico/Temperatura%20y%20Lluvia/PREC/2023.pdf
Esparza Sandoval, S. (2010). Distribución geográfica del género Opuntia (cactaceae) en México. Tesis ubicada en la Mediateca del Centro de Información en Ciencias Biomédicas (CICBI), en el Centro de Información en Ciencia, Tecnología y Diseño (CICTD) y en la Biblioteca del Posgrado de la Facultad de Ciencias Químicas.
Gaona, E. G., Munguía, A. M. G., Ramírez, J. S. P., Munguía, A. G., & Aguilar, L. P. Características de Los Nopales. El Nopal: ecofisiología del nopal en México, 15.
Jacobo, C. M. (2002). Caracterización genética de una colección de nopal (Opuntia spp.) de la región centro de México. Agricultura Técnica en México, 28(1), 3-14.
Luna-Vázquez, J., Zegbe-Domingez, J. A., Mena-Covarrubias, J. & Rivera-Lozano, M. T. (2012). Manejo de plantaciones de nopal tunero en el altiplano potosino, San Luis Potosi: INIFAP.
Mendoza-Orozco, M. E., Morales-Flores, F. J. & Méndez-Gallegos, S. d. J., 2019. Tipología de productores de nopal tunero en Pinos, Zacatecas. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 10(22), pp. 77-88.
Sagarpa, 2010. Plan rector sistema producto estatal nopal tuna, Pinos: s.n.
Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP), 2020. Avance de Siembras y Cosechas Resumen nacional por cultivo. Disponible en: http://infosiap.siap.gob.mx:8080/agricola_siap_gobmx/AvanceNacionalSinPrograma.do;jsessionid=BC0657BA758C4BBF440035F0956C18E6
Zegbe-Domínguez, J. A. & Mena-Covarrubias , J., 2006. Modificación de la floración, maduración y época de cosecha del nopal tunero (Opuntia spp.), Calera, Zacatecas: INIFAP.
Ávila-Perches, M., Huerta-Zurita R., Gámez-Vázquez., J., Jesús; Zamora-Díaz, M., Gámez-Vázquez., F. (2020). Comportamiento agronómico de variedades de cebada en diferentes fechas de siembra In Memoria de la XXXII Semana Internacional de Agronomía FAZ. pp. 178-183 http://faz.ujed.mx/siafaz/
Ávila-Perches, M., Huerta-Zurita, R., Gámez-Vázquez, J., Zamora-Díaz, M., Gámez-Vázquez, F. (2021). Calidad física y contenido de proteína de semilla de cebada en diferentes fechas de siembra. In Memoria de la XXXIII Semana Internacional de Agronomía FAZ, pp. 271-277. http://faz.ujed.mx/siafaz/
Ávila-Perches, M., Huerta-Zurita, R., Gámez-Vázquez, J., Zamora-Díaz, M., Gámez-Vázquez, F (2021). Componentes del rendimiento de semilla de variedades de cebada. In Memoria de la XXXIII Semana Internacional de Agronomía FAZ. pp. 337-342. http://faz.ujed.mx/siafaz/
Ávila Perches, M.A; Gámez Vázquez, J.A; Zamora Díaz, M.R; Gámez Vázquez, F.P. y Gómez-Espinoza, J (2024). Rendimiento y características agronómicas de cebada con riego normal y restringido. In Memoria de la XXXVI Semana Internacional de Agronomía Facultad de Agricultura y Zootecnia, Venecia, Dgo. pág. 966-972.
Food and Agriculture Organization of the United Nations. (2024). Consultado en www.fao.org/faostat
Mendoza-Esparza, M., Cortez-Bueno, J., Rivera-Ramírez, J., Rangel-Lugo, L., Andrio-Enriquez, E., Cervantes-Ortiz, F. (
2011)
. Época y densidad de siembra en la producción y calidad de semilla de triticale (X Triticosecale Wittmack). Agronomía Mesoamericana, 22(2):309-316.
Pérez-Rodríguez, J., Zamora-Diez, M., Mejía-Almada, J., Hernández-López, F., Solano-Heras,
F. (2016). Evaluación de 10 genotipos de cebada (Hordeum vulgare L.) en cinco fechas de siembra y dos ciclos agrícolas. Agro ciencia 50: 201-213.
Ríos-Duran. R., Brito-Ramírez, R., Delgado-López, H. (2011). Evaluación del rendimiento y sus componentes en genotipos de cebada (Hordeum vulgare L.) diferenciados por su tipo de espiga y grano. Revista. U.D.C.A Act. & Div. Científica 14(2) 55-63.
Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). 2023. Consultado en: www.siap.gob.mx
Aguilar-Carpio, C., Juárez-López, P., Campos-Aguilar, I. H., Alia-Tejacal, I., Sandoval-Villa, M., & López-Martínez, V. (2018). Análisis de crecimiento de uchuva (Physalis peruviana L.) cultivada en hidroponía e invernadero.  Revista Chapingo Serie Horticultura, 24(3), 191-202.
DOI: http://dx.doi.org/10.5154/r.rchsh.2017.07.024
Alcántar González G., Sandoval Villa M. 1999. Manual de Análisis Químico de Tejido Vegetal. Guía de Muestreo, Preparación, Análisis e Interpretación.  Publicación Especial No. 10. Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo A.C. Chapingo, México.
Di Benedetto, A., y Tognetti, J. (2016). Técnicas de análisis de crecimiento de plantas: su aplicación a cultivos intensivos. RIA, 42(3), pp. 258-282.    Recuperado de
https://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_issuetoc&pid=1669-231420160003&lng=es&nrm=iso
Flórez R., V. J. 2021. Productos relevantes del proyecto fortalecimiento de la competitividad del sector floricultor colombiano mediante el uso de ciencia, tecnología e innovación aplicadas en Cundinamarca. Primera edición. Ediciones Unisalle. Bogotá, Colombia.
González-Jiménez, S. L., Castillo-González, A. M., García-Mateos, M. R., Valdez- Aguilar, L. A., Ybarra-Moncada, C., & Avita-García, E. (2020). Respuesta de zarzamora (Rubus spp.) cv. Tupy a la salinidad. Revista Fitotecnia Mexicana, 43(3), 299-306. DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2020.3.299
Hoagland, D. R., Arnon, D. I. 1950. The water-culture method for growing plants without soil. California Agricultural Experiment Station, 347, 1-32.
Luna-Fletes, J. A., Cruz-Crespo, E., & Can-Chulim, A. (2021). Piedra pómez, tezontle y soluciones nutritivas en el cultivo de tomate cherry. Terra Latinoamericana, 39, 1-12.
DOI: https://doi.org/10.28940/terra.v39i0.781
Miranda-Villagómez, E., Carrillo-Salazar, J. A., Rodríguez-Mendoza, M. N., Colinas- León, M. T., Livera-Muñoz, M., & Gaytán-Acuña, E. A. (2014). Crecimiento y calidad del tallo floral de Freesia x hybrida en hidroponía. Revista Fitotecnia Mexicana, 37(1), 31-39.
     DOI: https://revistafitotecniamexicana.org/37-1.html
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera) (2015). Anuario estadístico de la producción agrícola. Recuperado de https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera) (2023). Anuario estadístico de la producción agrícola. Recuperado de https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Steiner, A. A. 1984. The universal nutrient solution. Memories VI International Congress on Soilles Culture. Wageningen, The Netherlands.
Caluguillin Quishpe, E. C., & Chalampuente Flores, D. S. (2023). Evaluación agronómica de 144 líneas promisorias de cebada maltera (Hordeum vulgare L.) en la Granja Experimental “La Pradera” Chaltura, Imbabura.
Carretto, L. M., Dietz, J. I., & Da Silva, L. V. (2024). Habilidad competitiva de verdeos de invierno frente a Raphanus sativus. Asociación Argentina de Ciencia de las Malezas (ASACIM).
Fierro, A. E., Córdova, E. M., Guerrero, L. C., Porras, J. G. U., Castellanos, E. A. R., & Barragán, L. A. S. (2024). De desecho a alimento: Aprovechamiento del residuo cervecero en la nutrición animal. Química Hoy, 13(4), 23-30.
García, U. (2022). Limpieza y clasificación de la cebada y la malta. Cerveza y Malta, (235), 42-53.
González González, M., Zamora Díaz, M., & Solano Hernández, S. (2016). Agronomic and physical evaluation in advanced lines of malting barley. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 7(1), 159-171.
Khanal, R., Mills, A., Choo, T. M., Fillmore, S., Pageau, D., & Mountain, N. (2022). Optimum seeding rates for hulless barley production in eastern Canada. Canadian Journal of Plant Science, 102(6), 1177-1184. https://doi.org/10.1139/cjps-2022-0040
Riofrío, F. M. C., & León, F. E. M. (2021). Caracterización agronómica de 16 variedades de cebada maltera realizadas en el centro experimental Tunshi. Polo del Conocimiento: Revista Científico-Profesional, 6(1), 637-655. https://doi.org/10.23857/pc.v6i1.2257
Tigasi Caisaguano, T. S. (2024). Evaluación del comportamiento agronómico de una variedad de cebada dística (Hordeum vulgare L.) INIAP y cuatro líneas promisorias INIAP en el Campus Salache de la Universidad Técnica de Cotopaxi, 2023–2024 (Tesis doctoral, Universidad Técnica de Cotopaxi). Repositorio UTC.
Velasco López, J. L., Soto Ortiz, R., Ail Catzim, C. E., Grimaldo Juárez, O., Avilés Marín, S. M., & Lozano del Río, A. J. (2020). Biomass and grain yield in triticale varieties in the Mexicali valley. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 11(5), 1097-1109.
Zamora Díaz, M. R., Pérez Ruiz, J. A., Huerta Zurita, R., López Cano, M. L., Gómez Mercado, R., & Rojas Martínez, I. (2017). Maravilla: variedad de cebada forrajera para Valles Altos de México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 8(6), 1449-1454.
 
Alcántar G., G. y M. Sandoval V. 1999. Manual de análisis químico de tejido vegetal. Publicación Especial 10. Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo. Chapingo, estado de México.
Sánchez, A. R. Á., Gómez, L. M. C., Freile, M. F. M., Reyes-Pérez, J. J., Casa           có, A. R. B., Véliz, M. B. C., & Alvarado, W. H. S. (2021). Respuesta agronómica de plantas de tomate solanum lycopersicum L. a la aplicación de bradyrhizobium japonicum y quitosano. Ciencia Latina Revista Científica Multidisciplinar, 5(6), 11361-11374.
Food and Agriculture Organization of the United Nations (2024) – with major processing by Our World in Data. “Tomato production – FAO” [dataset]. Food and Agriculture Organization of the United Nations, “Production: Crops and livestock products”.
Sharma, N., & Singhvi, R. (2017). Effects of chemical fertilizers and pesticides on human health and environment: A review. International Journal of Agriculture, Environment and Biotechnology, 10(6), 675–679. doi:10.5958/2230‑732X.2017.00083.3
Song, H., Guo, J., Ren, T., Chen, Q., Li, B. and Wang, J. (2012), Increase of Soil pH in a Solar Greenhouse Vegetable Production System. Soil Science Society of America Journal, 76: 2074-2082. https://doi.org/10.2136/sssaj2011.0445
De Tender, C., Mesuere, B., Haegeman, A., Ruttink, T., & Vandecasteele, B. (2020). Chitosan induces plant hormones and defenses in tomato root exudates. Frontiers in Plant Science, 11, 572087. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.572087
Lakshari, W. A. I., Sukanya, M., & Hewavitharan, K. H. I. K. (2023). Effect of different concentrations of foliar application of chitosan on growth development of tomato (Solanum lycopersicum L.) cultivar grown in Sri Lanka. Journal of research technology and engineering, 4(3), 01-08
Chanratana, M., Joe, M. M., Roy Choudhury, A., Anandham, R., Krishnamoorthy, R., Kim, K., Jeon, S., Choi, J., Choi, J., & Sa, T. (2019). Physiological response of tomato plant to chitosan-immobilized aggregated Methylobacterium oryzae CBMB20 inoculation under salinity stress. 3 Biotech, 9(11), 397. https://doi.org/10.1007/s13205-019-1923-1
Rouphael, Y., & Colla, G. (2020). Editorial: Biostimulants in agriculture. Frontiers in Plant Science, 11, 40. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00040
Halpern, M., Bar-Tal, A., Ofek, M., Minz, D., Muller, T., & Yermiyahu, U. (2015). The use of biostimulants for enhancing nutrient uptake. Advances in Agronomy, 130, 141–174. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2014.10.001
Ali, M. S., Zahid, Z. H., Siddike, M. N., Bappi, Z. H., Payel, N. A., Islam, T., & Mohsin, G. M. (2023). Effect of different levels of organic fertilizer on growth, yield and economic benefits of radish (Raphanus sativus L.). Journal of Bioscience and Agriculture Research, 30(02), 2533-2540.
Banihani, S. A. (2017). Radish (Raphanus sativus) and diabetes. Nutrients, 9(9), 1014.
Calero, H. A., Díaz, Y. P., Calzada, K. P., Rodríguez, E. Q., & Olivera, D. (2019). Efecto de tres bioestimulantes en el comportamiento morfológico y productivo del cultivo del rábano (Raphanus sativus L.). Revista de la Facultad de Agronomía de la Universidad del Zulia, 36(1), 54-73.
Cruz, D. D., Muguruza Crispin, N. E., Caira Mamani, C. M., Castro Bartolomé, H. J., Inga Sotelo, M. A., Alberto, M. N. M., … & Diestra Salinas, F. (2024). Biological and chemical characterization in relation to the yield of radish (Raphanus sativus L.) nourished with humus from plant residues. Brazilian Journal of Biology, 84, e281235.
Lanna, N. B., Silva, P. N. L., Colombari, L. F., Corrêa, C. V., & Cardoso, A. I. I. (2018). Residual effect of organic fertilization on radish production. Horticultura Brasileira, 36(1), 47-53.
Kováčik, P., Olšovská, K., Smoleń, S., & Ledwożyw-Smoleń, I. (2021). Parameters of radish phytomass (Raphanus sativus L.) determined by vermicompost and earthworms (Eisenia fetida). Folia Horticulturae, 33(1), 217-233.
Agostinho, F. B., Tubana, B. S., Martins, M. S. y Datnoff, L. E. (2017). Effect of different silicon sources on yield and silicon uptake of rice grown under varying phosphorus rates. Plantas, 6(3):35. https://doi.org/10.3390/plants6030035
Biju, S., Fuentes, S. y Gupta, D. (2023). Novel insights into the mechanism(s) of silicon-induced drought stress tolerance in lentil plants revealed by RNA sequencing análisis. BMC Plant Biology, 23(1):498. https://doi.org/10.1186/s12870-023-04492-5
Blanco, F.F. y M.V. Folegatti. (2003). A new method for estimating the leaf area index of cucumber and tomato plants. Horticultura Brasileira, 21(4):666-669. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-05362003000400019
Dai, Z., Yu, L., Ma, P., Wang, Y., An, S. y Liu, M. (2024. Synergistic effects of silicon and goethite co-application in alleviating cadmium stress in rice (Oryza sativa L.): Insights into plant growth and iron plaque formation mechanisms. Ecotoxicol Environ Safety, 281:116570. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2024.116570
Dos Santos, S.M.M., de Mello, P.R., de Souza, J.J.P., Teixeira, G.C.M., dos Santos, D.J.C. and de Medeiros, R.L.S. (2021). Silicon supplied via foliar application and root to attenuate potassium deficiency in common bean plants. Scientific Reports, 11(1):19690. https://doi.org/10.1038/s41598-021-99194-z.
Henriet, C., Draye, X., Oppitz, I., Swennen, R. y Delvaux, B. (2006). Effects distribution and uptake of silicon in banana (Musa spp.) under controlled conditions. Plant and Soil, 287(1-2):359-374.
Kostic, L., Nikolic, N., Bosnic, D., Samardzic, J. y Nikolic, M. (2017). El silicio aumenta la absorción de fósforo (P) por el trigo en condiciones de suelo ácido bajo. Planta y Suelo, 419: 447-455.
Lee, K.E., Adhikari, A., Kang, S.M., You, Y.H., Joo, G.J., Kim, J.H., Kim, S.J. y Lee, I.J. (2019). Isolation and characterization of the high silicate and phosphate solubilizing novel strain Enterobacter ludwigii GAK2 that promotes growth in rice plants. Agronomy, 9(3):144. https://doi.org/10.3390/agronomy9030144
Pavlovic, J., Kostic, L., Bosnic, P., Kirkby, E.A. and Nikolic, M. (2021). Interactions of silicon with essential and beneficial elements in plants. Front. Plant Sci. 12:697592. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.697592
Rao, G.B., PI, P.Y., and Syriac, E.K. (2017). Silicon nutrition in rice: A review. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 6(6): 390-392.
Rizwan, M., Ali, S., Ibrahim, M., Farid, M., Adrees, M., Bharwana, S.A., Zia-ur-Rehman, M., Qayyum, M.F. and Abbas, F. (2015). Mechanisms of silicon-mediated alleviation of drought and salt stress in plants: a review. Environ Sci Pollut Res, 22(20):15416-31.
Rodríguez, F.H. and A.J. Rodríguez. (2015). Métodos de análisis de suelos y plantas: criterios de interpretación. Editorial Trillas, 288 p. 39. Saavedra, R.G. (ed.) 2017. Manual de producción de lechuga. Boletín INIA no. 374.
Wu, J.W., Geilfus, C.M., Pitann, B. y Muhling, K.H. (2016). Silicon-enhanced oxalate exudation contributes to alleviation of cadmium toxicity in wheat. Environmental and Experimental Botany, 131:10-18. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2016.06.012
Zejun, G., Siyao L., Chaoqun, X., Mingyue, W., Lingyu, S., Hezi, H., Zhanhong, Li, Xi Chen, Lei Jiang, Hai-Lei Zheng. (2025). Silicon enhances potassium uptake and leaf growth in Avicennia   marina, a silicon-accumulating mangrove plant with silicon transporters. Industrial Crops and Products, 228:120876. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2025.120876.
BANCO MUNDIAL. (31 de MARZO de 2023). Obtenido de AGRICULTURA Y ALIMENTOS: https://www.bancomundial.org/es/topic/agriculture/overview
Cabrera, J. M., Piguave, C. A., & Mera., G. M. (2021). Estudio de la fertilización química y orgánica y su efecto en el cultivo de maíz (Zea mays L.), en una comuna. ALFA. Revista de Investigación en Ciencias Agronómicas y Veterinarias, 145-152.
Castillo, Á. R., & Ligarreto, G. A. (2010). Relación entre nitrógeno foliar y el contenido de clorofila, en maíz asociado con pastos en el Piedemonte Llanero colombiano. Revista Corpoica – Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 122-128.
FAO. (2009). Cómo alimentar al mundo en 2050. Recuperado el 17 de septiembre de 2025, de https://www.fao.org/fileadmin/templates/wsfs/docs/synthesis_papers/C%C3%B3mo_alimentar_al_mundo_en_2050.pdf
Guamán, R. N., Vera, T. X., Abril, Á. F., Cortázar, S. M., & Salguero, E. J. (2020). Evaluación del desarrollo y rendimiento del cultivo de maíz (Zea mays L.) utilizando cuatro híbridos. Siembra, 46-59. doi:doi.org/10.29166/siembra.v7i2.2196
Loja, Á. B., & Herrera., A. M. (2024). Optimización del recurso hídrico en maíz mediante riego por goteo superficial y subsuperficial. Roca: revista cientifica, 1-19.
Rojas, W. L., Rojas, J. C., Villalobos, E. V., Hernández, A. A., Aguilar, G. C., & León., G. G. (2023). Productividad de maíz (Diamantes 8843) bajo diferentes densidades de siembra y dosis de nitrógeno. Agronomía Mesoamericana, 34(1).
SADER. (2023). Cultivando el Futuro: Agricultura Sostenible y Sustentable. Recuperado el 17 de Septiembre de 2025, de https://www.gob.mx/agricultura/articulos/cultivando-el-futuro-agricultura-sostenible-y-sustentable
Servicio Metereoligico Nacional Conagua. (2025). Resúmenes Mensuales de Lluvia y Temperatura. Obtenido de https://smn.conagua.gob.mx/es/climatologia/temperaturas-y-lluvias/resumenes-mensuales-de-temperaturas-y-lluvias
Servicio Nacional de Inspección y Certificación de Semillas [SNICS] (2014). Guía  Técnica  para  la  Descripción  Varietal  de  Maíz  (Zea  mays L.). Servicio Nacional de Inspección y Certificación de Semillas, Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. Tlalnepantla, Estado de México. México. 39 p.
Valdés, T. D., Ruvalcaba, L. P., Fernández, Y. E., Jiménez, R. L., & López, Á. L. (2014). Uso eficiente del agua y producción óptima en maíz, con el uso de cuatro dosis de nitrógeno. Revista Ciencias Técnicas Agropecuarias, 32-36.
Amhed, M., Aslam, M., Stöckle, C., Higgins, S. S., Hassan, F., & Hayat, R. (2017). Can growing degree days and photoperiod predict spring wheat phenology? Frontiers in Environmental Science, 5, 57. https://doi.org/ 10.3389/fenvs.2017.00057
Cervantes-Ortiz, F., Noriega-Carmona, M. A., Solís-Moya, E., Andrio-Enríquez, E., Rangel-Lucio, J. A., Rodríguez-Pérez, G., … y García-Rodríguez, J. G. (2019). Efecto de la fecha de siembra sobre la calidad de semilla de trigo en el Bajío, México. Revista fitotecnia mexicana, 42(4), 375-384.
Fuentes-Dávila, G., Torres-Cruz, M. M., & Félix-Valencia, P. (2023). Cold units and their relationship with wheat grain yield in the Yaqui Valley, Sonora, Mexico. GSC online press, 17(3), 073–080.
Murray-Tortarolo, G. (2021). Seven decades of climate change across Mexico. Atmósfera, 34(2), 217-226.
SAS, Institute, Inc. 2002. Version 9.0 of system SAS for Windows, copyright. SAS Institute Inc. Cary, NC. USA.
Solís M. E., Hernández M., A. Borodanenko, J. L. Aguilar A. y O. A. Grajeda C. (2004). Duración de la etapa reproductiva y el rendimiento de trigo. Revista Fitotecnia Mexicana, 27(4), 323-332.
Hyles, J., Bloomfield M. T., Hunt, J. R., Trethowan, R. M., Trevaskis, B. (2020). Phenology and related traits for wheat adaptation. The Genetics Society, 125 (6): 417–430. https://doi.org/10.1038/s41437-020-0320-1
Solís M., E., S. A. Ríos R., H. García N., A. Arévalo V., O. A. Grageda C., M. A. Vuelvas C., J. G. Días de León T., J. L. Aguilar A., A. Ramírez R., J. Narro S., R. Bujanos M., A. Marín J., y R. Peña M. (2007). Producción de trigo de riego en el Bajío. Folleto Técnico Núm. 3. INIFAP, Campo Experimental Bajío. Celaya, Guanajuato, México. 94 p.
Soomro, U. A., M. U. Rahman, E. A. Odhano, S. Gul, and A. Tareen. (2009). Effects of sowing method and seed rate on growth and yield of wheat (Triticum aestivum). World Journal of Agricultural Sciences 5 (2) 159-162.
Suaste-Franco, M. Pilar, Solís-Moya, Ernesto, Ledesma-Ramírez, Lourdes, de la Cruz-Gonzalez, M. Lourdes, Grageda-Cabrera, O. Arath, & Báez-Pérez, Aurelio. (2013). Efecto de la densidad y método de siembra en el rendimiento de grano de trigo (Triticum aestivum L.) en el Bajío, México. Agrociencia, 47(2), 159-170. Recuperado el 28 de agosto de 2025, de:
http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1405-31952013000200005&lng=es&tlng=es.
Anderson, W. K., and Impiglia, A. (2002).  Management of dryland wheat. In: Curtis, B.C., Rajaram, S. and Gómez H. (eds). Bread Wheat: Improvement and Production. FAO Plant Production and Protection Series, 30. http://www.fao.org/docrep/006/y4011e/y4011e0s.htm#bm28. (Consulta: agosto 2024).
Whaley, J. M., Sparkes, D. L., Foulkes, M. J., Spink, J. H., Semere, T., et al. (2000). The physiological response of winter wheat to reductions in plant density. Annals of Applied Biology, 137(2), 165-177.
                https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.2000.tb00048.x
Ramírez Pérez, L. O., Zamora Villa, V. M., Colín Rico, M., & De León Castillo, H. (2021). Interacción genotipo ambiente en fracciones de forraje de trigos en tres muestreos. Revista Mexicana De Ciencias Agrícolas, 12(3), 485-498. https://doi.org/10.29312/remexca.v12i3.2621
SAS, Institute, Inc. 2002. Version 9.0 of system SAS for Windows, copyright. SAS Institute Inc. Cary, NC. USA.
Zadoks, J. C., Chang, T. T., & Konzak, C. F. (1974). A decimal code for the growth stages of cereals. Weed Research, 14, 415-421. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1365-3180.1974.tb01084.x
Caballero Salinas, J. C., Pizaña Vidal, H. A., González Cabañas, A. A., Núñez Ramos, E., Aguilar Cruz, F., & Ovando Salinas, E. (2023). Composición morfológica y rendimientos de maíces nativos sin uso de agroquímicos en Chiapas, México. Siembra, 10(2), e3997. https://doi.org/10.15359/siembra.10-2.3
Drobek, M., Frac, M. & Cybulska, J. (2019). Plant Biostimulants: importance of the quality and yield of horticultural crops and the improvement of plant tolerance to abiotic Stress—A review. Agronomy 9:335 
Castellanos-Reyes, M. A., Valdés-Carmenate, R., López-Gómez, A., & Guridi-Izquierdo, F. (2017). Mediciones de índices de verdor relacionadas con área foliar y productividad de híbrido de maíz. Cultivos ropicales, 38(3), 112–116. Recuperado de https://ediciones.inca.edu.cu/index.php/ediciones/article/view/16
CANIMOLT, Cámara Nacional de la Industria Molinera de Trigo. (2017). Reporte estadístico 2017 [Informe]. CANIMOLT. https://www.canimolt.org/compendio-estadistico-completo
Hernández Ochoa, I. M., Asseng, S., Kassie, T., Xiong, W., Robertson, R., Luz Pequeño, D. N., Sonder, K., & Hoogenboom, G. (2018). Climate change impact on Mexico wheat production. Agricultural and Forest Meteorology, 263, 373–387. https://doi.org/10.1016/j.agrformet.2018.09.008
Perea, E. (2025). Producción de trigo en México caerá 25% en el ciclo 2024/25: FIRA. Imagen Agropecuaria. Recuperado el 12 de septiembre de 2025, de:
https://imagenagropecuaria.com/2025/produccion-de-trigo-en-mexico-caera-25-en-el-ciclo-2024-25/
Rodríguez-González, Rosario E., Ponce-Medina, Juan F., Rueda-Puente, Edgar O., Avendaño-Reyes, Leonel, Paz Hernández, Juan J., Santillano-Cazares, Jesús, & Cruz-Villegas, Manuel. (2011). Interacción genotipo-ambiente para la estabilidad de rendimiento en trigo en la región de Mexicali, B.C., México. Tropical and subtropical agroecosystems, 14(2), 543-558. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1870-04622011000200015&lng=es&tlng=es.
SIAP, Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. (2024). Producción de trigo en México: estadísticas y tendencias [Informe]. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural, Dirección General de Información Agroalimentaria y Pesquera. Recuperado el 12 de septiembre de 2025, de: https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/953038/Trigo_Cristalino_Sep_2024.pdf
SIAP, Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. (2025). Producción de trigo en México: estadísticas y tendencias [Informe]. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural, Dirección General de Información Agroalimentaria y Pesquera. Recuperado en 12 de septiembre de 2025, de: https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Agremo©. (2024). Agremo Analyses – Plant Count & Health Monitoring. https://www.agremo.com/documentation/agremo-analyses/
Chin, R., Catal, C., & Kassahun, A. (2023). Plant disease detection using drones in precision agriculture. In Precision Agriculture. Springer, 24,1663-1682 https://doi.org/10.1007/s11119-023-10014-y
DJI. (2019). P4 Multispectral. https://www.dji.com/mx/p4-multispectral
Escobosa, I., Vázquez, M., Samaniego, B., Valle, R., Vázquez, J., & Núñez, F. (2022). Efecto del acolchado en repollo cultivado en el Valle de Mexicali. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 28, 197-206. https://doi.org/10.29312/remexca.v13i28.3275
Galanty, A., Grudzińska, M., Paździora, W., Służały, P., & Paśko, P. (2024). Do Brassica Vegetables Affect Thyroid Function?- A Comprehensive Systematic Review. International Journal of Molecular Sciences, 25(7), 3988. https://doi.org/10.3390/ijms25073988
García, H., Flores, H., Khalil, A., Ascencio, R., Tijerina, L., Vázquez, M., & Mancilla, O. (2020). Estimación de la fracción de cobertura de la vegetación en maíz (Zea mays) mediante imágenes digitales tomadas por un vehículo aéreo no tripulado (UAV). Revista Fitotecnia Mexicana, 43(4), 399-409. https://doi.org/10.35196/rfm.2020.4.399
Heddam, S., Kim, S., Elbeltagi, A., & Kisi, O. (2022). Random vector functional link network based on variational mode decomposition for predicting river water turbidity. 7, 245–264. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-91910-4.00015-7
Kitano, B. T., Mendes, C., Geus, A. R., Oliveira, H. C., & Souza, J. R. (2019). Corn Plant Counting Using Deep Learning and UAV Images. IEEE Geoscience and Remote Sensing Letters. 1-5. https://doi.org/10.1109/LGRS.2019.2930549
Lee, C. J., Yang, M. Der, Tseng, H. H., Hsu, Y. C., Sung, Y., & Chen, W. L. (2023). Single-plant broccoli growth monitoring using deep learning with UAV imagery. Computers and Electronics in Agriculture, 207. https://doi.org/10.1016/j.compag.2023.107739
Maurya, D. K., Maurya, S. K., Kumar, M., Chaubey, C., Gupta, D., Patel, K. K., Mehta, A. K., & Yadav, R. (2024). A Review on Precision Agriculture: An Evolution and Prospect for the Future. International Journal of Plant & Soil Science, 36(5), 363-374. https://doi.org/10.9734/ijpss/2024/v36i54534
Pix4D. (2024). PIX4Dfields. https://www.pix4d.com/es/producto/pix4dfields/
Qgis. (2023). QGIS. https://download.qgis.org/downloads/
Sangeetha, C., Moond, V., Rajesh G. M., Damor, J. S., Pandey, S. K., Kumar, P., & Singh, B. (2024). Remote Sensing and Geographic Information Systems for Precision Agriculture: A Review. International Journal of Environment and Climate Change, 14(2), 287–309. https://doi.org/10.9734/ijecc/2024/v14i23945
SOUTH. (2024). Galaxy G7. Guangzhou SOUTH Surveying & Mapping Technology Co., Ltd. https://www.southinstrument.com/product/details/pro_tid/3/id/210.html
Toscano, F., Fiorentino, C., Capece, N., Erra, U., Travascia, D., Scopa, A., Drosos, M., & D’Antonio, P. (2024). Unmanned Aerial Vehicle for Precision Agriculture: A Review. IEEE Access, 12, 69188-69205. https://doi.org/10.1109/ACCESS.2024.3401018
Yuan, J., Li, X., Zhou, M., Zheng, H., Liu, Z., Liu, Y., Wen, M., Cheng, T., Cao, W., Zhu, Y., & Yao, X. (2024). Rapidly count crop seedling emergence based on waveform Method (WM) using drone imagery at the early stage. Computers and Electronics in Agriculture, 220. https://doi.org/10.1016/j.compag.2024.108867
Enciso-M. J., Porter, D. y Péries X. 2007. Irrigation monitoring with soil water sensors. Texas cooperative extension. The Texas A and M University System. USA.
Ortiz-Enríquez J.E., Cortés-Jiménez J.M., Félix-Valencia P. 2003. Manejo de riegos para los principales cultivos del sur de Sonora. Folleto Técnico Núm 51. INIFAP-CIRNO-SAGARPA.
Shock, C. C., Wang F.X., Flock, R., Feibert, E., Schok, C.A. and Pereir, A. Irrigation Monitoring Using Soil Water Tension. EM 8900 Revised March 2013.Oregon State University. Extension Service.
Shahin, M. A. y Symons, S. J. 2007. Detection of hard vitreous and starchy kernels in amber durum wheat samples using hyperspectral imaging (GRL Number M306). NIR News. Vol. 5, Núm. 19, 16-18pp.
Agyarko‑Mintah, E., Cowie, A., Singh, B. P., Joseph, S., Van Zwieten, L., Cowie, A., Harden, S., & Smillie, R. (2017). Biochar increases nitrogen retention and lowers greenhouse gas emissions when added to composting poultry litter. Waste Management, 61, 138‑149. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2016.11.027
Bernal, M. P., & Moral, R. Alburquerque, J. A., (2009). Composting of animal manures and chemical criteria for compost maturity assessment. A review. Bioresource Technology, 100(22), 5444–5453. 
             https://doi.org/10.1016/j.biortech.2008.11.027
Casas-Rodríguez, S., Guerra- Casas, L., (2020). La gallinaza, efecto en el medio ambiente y posibilidades de reutilización. Producción animal. 32(3), pp.87-102. Recuperado de: http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S2224-79202020000300087&script=sci_arttext#B28
Lentz, R. D., & Sojka, R. E., (2018). Dairy manure influences soil properties, plant nutrient uptake, and tuber quality in potatoes. Agronomy Journal, 110(2), 1–12. Recuperado de: https://acsess.onlinelibrary.wiley.com/doi/full/10.1002/agj2.21660
Liu Q., Qiao N., Xu X, Xin X., Han JY., Tian Y., Ouyang H., y  Kuzyakov Y. (2016) Nitrogen acquisition by plants and microorganisms in a temperate grassland Sci Rep. 10;6:22642. Recuperado de:
            https://www.nature.com/articles/srep22642
Luna, R., Espinosa, C., Trávez, T., Ulloa, M., Espinoza, C. y Bejarano, A. 2015. Respuesta de variedades de papa (Solanum tuberosum, L.) a la aplicación de abonos orgánicos y fertilización química. Publicado como nota técnica en Ciencia y Tecnología. 9(1):11-16. Recuperado de: (PDF) Respuesta de variedades de papa (Solanum tuberorum, L) a la aplicación de abonos orgánicos y fertilización química
Méndez-Alvarado, A. 2022. Evaluación de la composta producida en la Planta de Compostaje de Xalapa Veracruz. TESIS, pp. 64.
Peñaloza, J., Reyes, A., Gonzáles, A., Pérez, D., y Sangerman, D. (2019). Fertilización orgánica con tres niveles de gallinaza en cuatro cultivares de papa. Revista mexicana de ciencias agrícolas. 10(5), pp. 1139-11. Recuperado de: https://www.scielo.org.mx/pdf/remexca/v10n5/2007-0934-remexca-10-05-1139.pdf
Romi, M., & Macci, C. Di Matteo, L., (2024). Residual effect of compost and biochar amendment on soil chemical, biological, and physical properties and durum wheat response. Agronomy, 14(4), 749.  https://doi.org/10.3390/agronomy14040749
SEMARNAT (2018) NMX-AA-180-SCFI-2018 Disponible en línea: NORMA MEXICANA (semarnat.gob.mx)
Barrera-Redondo, J., Sánchez-De La Vega, G., Aguirre-Liguori, J. A., Castellanos-Morales, G., Gutiérrez-Guerrero, Y. T., Aguirre-Dugua, X., Aguirre-Planter, E., Tenaillon, M. I., Lira-Saade, R., & Eguiarte, L. E. (2021). The domestication of Cucurbita argyrosperma as revealed by the genome of its wild relative. Horticulture Research, 8(109), 1–14. https://doi.org/10.1038/s41438-021-00544-9
Cortés M, E., Álvarez M, F., & González S, H. (2009). LA MECANIZACIÓN AGRÍCOLA: GESTIÓN, SELECCIÓN Y ADMINISTRACIÓN DE LA MAQUINARIA PARA LAS OPERACIONES DE CAMPO. Revista CES/ Medicina Veterinaria y Zootecnia, 4(2).
Cross, N. (2002). 2. El proceso de diseño (F. R. Pérez Vázquez, Trans.). In MÉTODOS DE DISEÑO. Estrategias para el Diseño de Productos (pp. 29–42). Limusa (Grupo Noriega Editores).
Habib, A., Biswas, S., Siddique, A. H., M., M., Uddin, B., Hasan, S., MMH, K., Uddin, M., Islam, M., Hasan, M., Rahman, M., M., A., M., S. R., M., K., MA, I., & Rahman Matiar. (2015). Nutritional and Lipid Composition Analysis of Pumpkin Seed (Cucurbita maxima Linn.). Journal of Nutrition & Food Sciences, 5(4), 1–6. https://doi.org/10.4172/2155-9600.1000374
Larqué Saavedra, B. S., Cortés Espinoza, L., Sánchez Hernández, M. Á., Garay Ayala, A. V., & Sangerman-Jarquín, D. Ma. (2012). Análisis de la mecanización agrícola de la región Atlacomulco, Estado de México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 4, 825–837. http://www.inafed.gob.mx/work/templates/
Lira, R., Casas, A., & Blancas, A. (2016). Ethnobotany of Mexico: Interaction of People and Plants in Mesoamerica. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-6669-7
Mera Ovando, L. M., Bye Boettler, R. A., Villanueva Verduzco, C., & Luna Mera, A. (2011). Documento de diagnóstico de las especies cultivadas de Cucurbita L.
Negrete, J. C. (2011). Políticas de mecanización agrícola en México. Revista Iberoamericana de Ciencia, Tecnología y Sociedad–CTS., 1–23. www.revistacts.net
Peña Basurto, F., Castro Lara, D., Martínez Moreno, D., Rodríguez Ramírez, T., & Peralta Rodríguez, L. (2014). USO Y MANEJO DE LAS Calabazas Culticadas (Cucurbita spp.) EN EL ESTADO DE PUEBLA. AGRO PRODUCTIVIDAD, 7(6), 44–49.
Pérez De Corcho Fuentes, J. S., Herrera Suárez, M., Vivas Vivas, R. J., García, G., & Valdiviezo, R. (2017). La mecanización agrícola: campo de acción de la ingeniería agronómica. Revista Siembra, 4(1), 59–65.
Rios Santos, E., González Santos, R., Cadena Iñiguez, J., & Mera Ovando, L. (2018). DISTRIBUCIÓN DE LAS ESPECIES CULTIVADAS Y PARIENTES SILVESTRES DE CALABAZA (Cucurbita L.) EN MÉXICO. AGRO PRODUCTICIDAD, 11(9), 21–27. https://www.
Rodríguez-Amaya, R., Montes-Hernández, S., Antonio Rangel-Lucio, J., Mendoza-Elos, M., & Latournerie-Moreno, L. (2009). CARACTERIZACIÓN MORFOLÓGICA DE LA CALABAZA PIPIANA (Cucurbita argyrosperma Huber). Agricultura Técnica En México, 35(4), 378–388.
Gómez, L.F.; Ríos-O., L.A.; Eschenhagen-D., M.L. 2015. El concepto de sostenibilidad en agroecología. Revista UDCA Actualidad & Divulg. Científica, 18(2), 329-337. http://www.scielo.org.co/ scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0123-42262015000200005&lng=en&tles.
HLPE. 2019. Agroecological and other innovative approaches for sustainable agriculture and food systems that enhance food security and nutrition. FAO, High-Level Panel of Experts (HLPE). Roma.
Levidow, L. 2020. Agroecology’s societal benefits depend on solidaristic relationships: some experiences from Brazil. Proyecto: ‘Research Partnership for an Agroecology-Based Solidarity Economy in Bolivia and Brazil’, financiado por UK’s Arts & Humanities Research Council (AHRC), Global Challenges Research Fund, No. AH/T004274/1. https://www.agroecology-europe.org/wp-content/uploads/2021/10/Month-of-Agroecology-Article-on-Social-Values-Les-Levidow-.pdf
Monterroso-Rivas, A.I.; Conde-Álvarez, A.C.; Gómez-Díaz, J.D.; López-García, J. 2009. Indicadores de vulnerabilidad y cambio climático en la agricultura de México. Zonas Áridas 11: 47-60. https://aeclim.org/wp-content/uploads/2016/02/0086_PU-SA-VIII-2012-A_MONTERROSO.pdf
ONU. 2023. Informe sobre los ODS 2023. Editor New York, NY, 10017, United States of America. Jennifer Ross. https://unstats.un.org/sdgs/report/2023/The-Sustainable-Development-Goals-Report-2023_Spanish.pdf?_gl=1*1gbmo64*_ga*MzE5NjY4NzEyLjE3NjAxNzI3NjE.*_ga_ TK9BQL5X7Z*czE3NjAxNzI3NjEkbzEkZzEkdDE3NjAxNzMwMzEkajYwJGwwJGgw
SIAP. 2024. Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. Dirección General del SIAP. SADER. Cd.Mx. https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Chen, X., & Smith, J. D. (2024). Economic analysis of irrigation water consumption in urban agriculture. Urban Forestry & Urban Greening, 85, 128021.
Comisión Nacional del Agua (CONAGUA). (2021). Estadística del Agua en México 2021. https://files.conagua.gob.mx/conagua/publicaciones/Publicaciones/EAM%202021.pdf
García, M., Rodríguez, P., & Fernández, A. (2023). Smart irrigation system using IoT and neural networks. Journal of Agricultural Engineering, 45(2), 123–135.
Jain, R. K. (2023). Smart Agricultural Technology. Smart Agricultural Technology, 4, 100215. https://doi.org/10.1016/j.atech.2023.100215
Lal, R. (2013). Gestión del carbono del suelo y cambio climático. Carbon Management, 4(4), 439–462. https://doi.org/10.4155/cmt.13.41
Machado-Díaz, E., & Coto-Fuentes, H. (2017). Sistema de adquisición de datos con Python y Arduino. Revista Ciencia e Ingeniería y Desarrollo Tec Lerdo, 3, 1–6. https://teclerdo.tecnm.mx/revista/ciencia-e-ingenieria/article/view/45
Márquez, J. E., Prieto, A., Manrique, M., & Sánchez, Ó. (2024). Sistema de riego automatizado para un cultivo de pequeña superficie. Revista Tecnológica – ESPOL, 36(2), 32–45. https://doi.org/10.37815/rte.v36n2.1227
Martínez, R., & López, C. (2022). Water-use efficiency in small-scale vegetable production. Agricultural Water Management, 271, 107768. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2022.107768
Moreira Calle, I. A., & Alaña Pután, J. A. (2025). Desarrollo de un sistema de monitoreo inalámbrico de temperatura y humedad aplicado a un sistema de riego en zonas rurales basado en Arduino y comunicación LORA WAN (Bachelor’s thesis). http://repositorio.ug.edu.ec/handle/redug/74330
Reyes, F., & Cid, J. (2015). ARDUINO: Aplicado en Robótica, Mecatrónica e Ingenierías. Alpha Editorial.
Ríos, J. R. M., Mora, N. M. L., Ordóñez, M. P. Z., & Sojos, E. L. L. (2016). Evaluación de los frameworks en el desarrollo de aplicaciones web con Python. Archivo de la Revista Latinoamericana de Ingeniería de Software, 4(4), 201–207. http://ing-software.ec/revista/index.php/ring_software/article/view/69
Rodríguez, J., Martínez, L., & González, R. (2023). Soil moisture monitoring using resistance sensors for irrigation scheduling. Computers and Electronics in Agriculture, 204, 107557. https://doi.org/10.1016/j.compag.2022.107557
Thompson, K. W., & Lee, S. H. (2022). Optimal irrigation depths for vegetable crops in controlled environments. Horticulture Technology, 32(4), 456–465. https://doi.org/10.21273/HORTTECH04998-22
Choukri, H., El Haddad, N., Aloui, K., Hejjaoui, K., El-Baouchi, A., Smouni, A., Thavarajah, D. Maalouf, F. & Kumar, S. (2022). Effect of high temperature stress during the reproductive stage on grain yield and nutritional quality of lentil (Lens culinaris Medik). Frontiers in nutrition, 9, 857469. https://doi.org/10.3389/fnut.2022.857469
de Medeiros, A. D., da Silva, L. J., da Silva, J. M., dos Santos Dias, D., & Pereira, M. D. (2020). IJCropSeed: An open-access tool for high-throughput analysis of crop seed radiographs. Computers and Electronics in Agriculture, 175, 105555. https://doi.org/10.1016/j.compag.2020.105555
Del Coco, M., Laddomada, B., Romano, G., Carcagnì, P., Kumar, S., & Leo, M. (2022). Characterization of a collection of colored lentil genetic resources using a novel computer vision approach. Foods, 11(24), 3964. https://doi.org/10.3390/foods11243964
Dutta, H., KM, S., Aski, M., Mishra, G., Sinha, S., Vijay, D., Ct, M., Das, S., Pawar, P., Mishra, D., Singh, A. & Dikshit, H. (2023) Morpho-biochemical characterization of a RIL population for seed parameters and identification of candidate genes regulating seed size trait in lentil (Lens culinaris Medik). Front Plant Sci 14:1091432. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1091432
Jackson, N., Noble, S. D., & Vandenberg, A. (2021). Evaluating the effect of light exposure and seed coat on lentil cotyledon color by computer vision. Legume Science, 3(4), e98. https://doi.org/10.1002/leg3.98
Kaale, L. D., Siddiq, M., & Hooper, S. (2023). Lentil (Lens culinaris Medik) as nutrient‐rich and versatile food legume: A review. Legume Science, 5(2), e169. https://doi.org/10.1002/leg3.169
Plaza, J., Morales-Corts, M. R., Pérez-Sánchez, R., Revilla, I., & Vivar-Quintana, A. M. (2021). Morphometric and nutritional characterization of the main Spanish lentil cultivars. Agriculture, 11(8), 741. https://doi.org/10.3390/agriculture11080741
Reddy, M. S. R., Lal Ahamed, M., & andD Ramesh, D. R. B. (2024). DUS characterization of lentil (Lens culinaris L.). The Andhra Agric. J, 71(2), 163-172. https://doi.org/10.61657/aaj.2024.110
Ayala Quispe, E. F. (2019). Efecto antagónico in vitro de cepas nativas de Trichoderma sp. frente a los hongos fitopatógenos Colletotrichum sp. y Fusarium sp. Ayacucho, 2018. https://repositorio.unsch.edu.pe/items/cb6233fb-d17f-4e05-9651-dfcdcb28ff29
Bell, D. K., Well, H. D., and Markham, C. R. (1982). In vitro Antagonism of Trichoderma species against Six Fungal Plant Pathogens. Phytopathology, 72, 379-382. https://doi.org/10.1094 / Phyto-72-379
Chávez, A. C., Valenzuela, B. L., Escoboza, F. V., Armenta, Q. A., Holguin, R., & Luján, H. M. (2024).
Identificación y evaluación antagónica in vitro de cepas de Trichoderma spp. nativas contra patógenos del duraznero. Revista del Museo Argentino de Ciencias Naturales, 26, 109-120. https://doi.org/10.22179/revmacn.26.833 
De Souza, R. R., Moraes, M. P., Paraginski, J. A., Moreira, T. F., Bittencourt, K. C., & Toebe, M. (2021). Effects of Trichoderma asperellum on germination indexes and seedling parameters of lettuce cultivars. Current Microbiology, 79(1). https://doi.org/10.1007/s00284-021-02713-4
Giralda-Arellano, M., & Barrios-Acosta, D. (2021). Use of native yeasts as biocontrol agents for phytopathogenic fungi in grapes (Vitis vinifera subsp. vinifera L.). Multidisciplinary &Amp; Health Education Journal, 3(1), 85–91. Retrieved from https://journalmhe.org/ojs3/index.php/jmhe/article/view/17
Iqbal, S., Ashfaq, M., Malik, A. H., Haq, M. I., & Khan, K. S. (2022). Antagonistic screening and confronting potential of Trichoderma viride against Pakistani and American soil borne-pathogens (Pythium aphenidermatum, Fusarium oxysporum and Phytophthora capsici) in controlled conditions. Pakistan Journal Of Phytopathology, 34(1), 81-91. https://doi.org/10.33866/phytopathol.034.01.0752
Mesguida, O., Haidar, R., Yacoub, A., Dreux-Zigha, A., Berthon, J., Guyoneaud, R., Attard, E., & Rey, P. (2023). Microbial biological control of fungi associated with grapevine trunk diseases: A review of strain diversity, modes of action, and advantages and limits of current strategies. Journal Of Fungi, 9(6), 638. https://doi.org/10.3390/jof9060638
Mwaka, O., Mwamahonje, A., Nene, W., Rweyemamu, E., & Maseta, Z. (2024). Pesticides use and its effects on grape production: A review. Sustainable Environment, 10(1). https://doi.org/10.1080/27658511.2024.2366555
Oliveira, R. S., Chagas, L. F. B., Martins, A. L. L., Souza, M. C., Luz, L. L., Gomes, F. L. & Chagas Junior, A. F. (2022). Trichoderma in the phytopathogenic biocontrol. Bulg. J. Agric. Sci., 28 (4), 717–724 https://www.agrojournal.org/28/04-18.pdf
Udhayakumar, R., S., Usharani and A. Muthukumar.
(2019). Pathogenicity variation, morphological and cultural characteristic of Colletotrichum gloeosporioides isolates. Plant Archives 19 (1):425-430. http://www.plantarchives.org/PDF%2019-1/425-430%20(4604).pdf
Avendaño-Ruiz, B., Acosta-Martínez, A., & Varela-Llamas, R. (2010). El trigo en Baja California (Universidad Autónoma de Baja California (ed.); Vol. 1). Editorial Miguel Angel Porrúa.
Brajcich Gallegos, P., Cornejo Oviedo, E., Govaerts, B., Moncada de la fuente, J., Barrales Dominguez, S., Ornelas Ruiz, P., Obando Rodríguez, R., Galo Medina, J., Aguirre Elizondo, R., Reyes Muro, L., Ortíz Trejo, C., Vargas Mir, S., González Salamanca, M., Rodríguez Díaz, V., Mendoza Ruiz, C., Sánchez Galván, B., De la Vega García, P., & Medina Montaño, F. (2015). Agenda técnicia agrícola Baja California. https://vun.inifap.gob.mx/BibliotecaWeb/_Content?//=AT
Bunma, S., & Balslev, H. (2019). A Review of the Economic Botany of Sesbania (Leguminosae). The Botanical Review, 85(3), 185–251. https://doi.org/10.1007/s12229-019-09205-y
Espinoza-Alonso, J. A., Galicia-Juárez, M., Ail-Catzim, C. E., Cervantes-Díaz, L., Soto-Ortíz, R., Quisitán-Martínez, D., & Catañeda-Trujano, F. (2023). Cuantificación de nódulos en Sesbania grandiflora. En XXVI Congreso Internacional en Ciencias Agrícolas Memorias en extenso (pp. 516–519). Universidad Autónoma de Baja California. https://drive.google.com/file/d/16pFkZ0cmMHShBDD_09C11aT48_MRkQJA/view
Espinoza-Alonso, J. A., Galicia-Juárez, M., Soto-Ortiz, R., Ail-Catzim, C. E., Montiel Batalla, B. M., & Quisitán-Martínez, D. (2024). Producción de biomasa de cultivos de cobertura en plataforma de agricultura deconservación. En R. Torres-Ramos, A. Mendoza-Gómez, M. Beleño-Cabarcas, & A. Vázquez-Espinoza (Eds.), Producción agrícola sustentable:estrategias biotecnológicas para el fortalecimiento de la seguridad alimentaria (1a ed., pp. 13–21). Astra Editorial. https://www.researchgate.net/publication/390438727_Produccion_de_biomasa_de_cultivos_de_cobertura_en_plataforma_de_agricultura_de_conservacion
Karmakar, P., Singh, V., Yadava, R. B., Singh, D. B., Singh, R., & Kushwaha, M. (2016). Agathi [Sesbania grandiflora L. (Agast)]: Current Status of Production, Protection and Genetic Improvement.
Lorenzetti, L. A., & Fiorini, A. (2024). Conservation Agriculture Impacts on Economic Profitability and Environmental Performance of Agroecosystems. Environmental Management, 73(3), 532–545. https://doi.org/10.1007/s00267-023-01874-1
Magar, S. T., Timsina, J., Devkota, K. P., Weili, L., & Rajbhandari, N. (2022). Conservation agriculture for increasing productivity, profitability and water productivity in rice-wheat system of the Eastern Gangetic Plain. Environmental Challenges, 7, 100468. https://doi.org/10.1016/j.envc.2022.100468
Miller, P. R. (1996). Cultivos de Cobertura Para la Agricultura de California. Universidad de California, Division de Agricultura y Recursos Naturales. https://books.google.es/books?id=Eu-wBWrFWFwC
Prasad R., & Zhang So. (2022). Beneficial Microorganisms in Agriculture (R. Prasad & S.-H. Zhang (eds.)). Springer Nature Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-19-0733-3
SADER. (2024). Buscan autoridades y productores alternativas para el nuevo ciclo triguero en el Valle de Mexicali. Disponible en: https://www.gob.mx/agricultura/bajacalifornia/articulos/buscan-autoridades-y-productores-alternativas-para-el-nuevo-ciclo-triguero-en-el-valle-de-mexicali
Saldivia-Tejeda, A., Uribe-Guerrero, M. Á., Rojas-Cruz, J. M., Guera, O. G. M., Verhulst, N., & Fonteyne, S. (2024). Conservation agriculture enhances maize yields and profitability in Mexico’s semi-arid highlands. Scientific Reports, 14(1), 1–11. https://doi.org/10.1038/s41598-024-80928-8
SIAP. (2025). Avance de siembras y cosechas. https://nube.siap.gob.mx/avance_agricola/
Yépez, M., Cedeño, A., & Mera, C. (2022). Rentabilidad económica empresarial, análisis de costos caso Martagua S.A., Montecristi Ecuador. Polo del conocimiento, 7(2550-682X), 1806–1825. https://doi.org/10.23857/pc.v7i7
Botello Aguillón, C. (2018). Estimación de biomasa aérea de forrajes de invierno bajo riego a través de un dron (Master’s thesis).
Dos Santos Felipetto, H., Mercante, E., & Viana, O. H. (2023). Desempenho de um vant na determinação de índices de vegetação por diferença normalizada–NDVI na cultura de Crambe (Abyssinica Hochst). Observatorio de la economía latinoamericana, 21(10), 16259-16272.
Govaerts, B., & Verhulst, N. (2010). The normalized difference vegetation index (NDVI) greenseeker (TM) handheld sensor: toward the integrated evaluation of crop management. Part A-concepts and case studies.
Huang, S., Tang, L., Hupy, J. P., Wang, Y., & Shao, G. (2021). A commentary review on the use of normalized difference vegetation index (NDVI) in the era of popular remote sensing. Journal of forestry research, 32(1), 1-6.
Issaly, J. (2024). Seguimiento de los puntos críticos del cultivo de girasol para producción de semillas híbridas.
Kharuf-Gutierrez, S., Hernández-Santana, L., Orozco-Morales, R., Aday Díaz, O. D. L. C., & Delgado Mora, I. (2018). Análisis de imágenes multiespectrales adquiridas con vehículos aéreos no tripulados. Ingeniería electrónica, automática y comunicaciones, 39(2), 79-91.
Mogili, U. R., & Deepak, B. B. V. L. (2018). Review on application of drone systems in precision agriculture. Procedia Computer Science, 133, 502–509. https://doi.org/10.1016/j.procs.2018.07.063
Velasco-López, J. L., Roberto, S. O., Ail-Catzim, C., Grimaldo-Juárez, O., Avilés-Marín, S. M., & Lozano-del Río, A. J. (2020). Relación de índices fotográficos y NDVI con la producción de biomasa seca en triticale en el valle de Mexicali. Agro Productividad, 13(1).
Ahmed, N., Zhang, B., Deng, L., Bozdar, B., Li, J., Chachar, S., Chachar, Z., Jahan, I., Talpur, A., Gishkori, M. S., Hayat, F., & Tu, P. (2024). Advancing horizons in vegetable cultivation : a journey from ageold practices to high-tech greenhouse cultivation — a review. Frontiers in Plant Science, 15(April), 1–26. https://doi.org/10.3389/fpls.2024.1357153
Cheng, C., Fu, J., Su, H., & Ren, L. (2023). Recent advancements in agriculture robots: benefits and challenges. Machines, 11(1), 1–24. https://doi.org/10.3390/machines11010048
Han, L., Ma, H., Mo, M., Kumi, F. K., Hu, J., & Mao, H. (2024). Design and test of an efficient seedling pick-up device with a combination of air jet ejection and mechanical action. Journal of Agricultural Engineering, 55. https://doi.org/10.4081/jae.2024.1575
Han, L., Xiang, D., Xu, Q., Du, X., Ma, G., & Mao, H. (2023). Development of simplified seedling transplanting device for supporting efficient production of vegetable raw materials. Applied Sciences (Switzerland), 13(18), 10022. https://doi.org/10.3390/app131810022
Ji, D., Liu, L., Zeng, F., Zhang, G., Liu, Y., Diao, H., Tian, S., & Zhao, Z. (2024). Design and experimental study of a traction double-row automatic transplanter for Solanum Lycopersicum seedlings. Horticulturae, 10(7), 1–14. https://doi.org/10.3390/horticulturae10070692
Jiang, Z., Hu, Y., Jiang, H., & Tong, J. (2017). Design and force analysis of end-effector for plug seedling transplanter. PLoS Computational Biology, 12(7), 1–15. https://doi.org/https://doi.org/10.1371/journal.pone.0180229
Jin, X., Li, D. Y., Ma, H., Ji, J. T., Zhao, K. X., & Pang, J. (2018). Development of single row automatic transplanting device for potted vegetable seedlings. International Journal of Agricultural and Biological Engineering, 11(3), 67–75. https://doi.org/10.25165/j.ijabe.20181103.3969
Jin, X., Li, R., Ji, J., Yuan, Y., & Li, M. (2021). Obstacle avoidance transplanting method on kinect visual processing. International Journal of Agricultural and Biological Engineering, 14(5), 72–78. https://doi.org/10.25165/j.ijabe.20211405.6451
Magar, A. P., Nalawade, S. M., Walunj, A. A., Khadatkar, A., Bhangare, S. C., Bhalekar, M. N., Nimbalkar, C. A., & Gaikwad, B. B. (2023). Engineering Properties of Some Plug-type Vegetable Seedlings for Development of Automatic Vegetable Transplanter. Journal of Agricultural Engineering (India), 60(1), 1–13. https://doi.org/10.52151/jae2023601.1792
Nage, S. M., Mathur, S. M., & Meena, S. S. (2023). Vegetable Transplanters for India: A Review. Agricultural Science Digest, 43(2), 129–134. https://doi.org/10.18805/ag.D-5548.Submitted
Wang, X., Zhou, H., & Tong, J. (2024). The simplification and analytical verification of the static liquid bridge force model for particle adhesion in inferior seedling substrates. Surfaces and Interfaces, 53, 104994. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.surfin.2024.104994
Zhou, B., Miao, H., Guan, C., Ji, X., & Wang, X. (2024). Design and Test of Seedling-Picking Mechanism of Fully Automatic Transplanting Machine. Applied Sciences (Switzerland), 14(20), 9235. https://doi.org/10.3390/app14209235
AAEA. (2000). Commodity costs and returns estimation handbook. http://ageconsearch.umn.edu
Antillón Valdez, N. A., Olivas García, J. M., Carrillo Soltero, M. E., Guerrero Morelos, S., & Luján Álvarez, C. (2025). Factibilidad para producción y comercialización del dátil Medjool en Chihuahua. Trace, 87, 149–180. https://doi.org/10.22134/trace.87.2025.914
FAOSTAT. (2025). Datos sobre alimentación y agricultura. https://www.fao.org/faostat/es/#home
Morales Maza, A., Cabada Tavares, C. A., Mendoza Gómez, A., Núñez Ramírez, F., Cervantes Díaz, L., & Samaniego Gámez, B. Y. (2024). Paquete tecnológico de la palma datilera (Phoenix dactylifera L.) variedad Mejhoul para el noroeste de México.
Sagarnaga Villegas, L. M., Salas González, J. M., & Aguilar Ávila, J. (2018). Metodología para estimar costos, ingresos y viabilidad financiera y económica en unidades representativas de producción (1st ed.). Universidad Autónoma Chapingo (UACh), Centro de Investigaciones Económicas, Sociales y Tecnológicas de la Agroindustria y la Agricultura Mundial (CIESTAAM).
SIAP. (2025, June 5). Anuario estadístico de la producción agrícola. https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/
Villasmil Molero, M. del C., Reyes Díaz, J. G., & Socorro González, C. C. (2020). Tipos de rentabilidad: consecuencias de una eficiente gestión estratégica de costos en empresas manufactureras del plástico. In Y. A. Rincón Quintero, J. A. Restrepo Morales, & J. G. Vanegas López (Eds.), Funciones esenciales para la gestión de las pequeñas y medianas empresas (1st ed., pp. 269–296). Tecnológico de Antioquia.
Campesino sin Fronteras. 2020. Advocating for working families to build a brighter future. promotoras de la salud. Recuperado de  https://www.campesinossinfronteras.com/
CECATI 52. 2025. Evento conmemorativo de los 10 años de Fundación de Por tu Salud y Nutrición, IAP. Evento. Página de Facebook]www.dgcft.sems.gob.mx. Recuperado de Septiembre, 2025.evención. 2025Tribuna, Ciencia y Salud, lunes, 8 de septiembre de (Página de Facebook]www.oem.com.mx).
Hospital de Jesús (1940). Historia y creación de la denominación de Institución de Asistencia Privada. Secretaria de la Cultura, INAH. México.
Organización Mundial de la Salud (OMS). Health promotion is the process of enabling people to increase control over, and to improve their health.” Health Promotion Glossary, 1998. Recuperado de https://www.who.int/health-topics/health-promotion#tab=tab_1
Por tu salud y nutrición IAP. (2025). Conócenos. Recuperado de https://www.portusaludynutricion.org/conocenos/
Ayala-Tafoya, F., López-Urquídez, G. A. Parra-Delgado, J. M., Retes-Manjarrez, J. E., López-Orona, C. A. y Yáñez-Juárez, M. J. 2020. Vermicomposta, auxinas sintéticas y producción de calabacita (Cucurbita pepo L.) en invernadero. Terra Latinoamericana 38: 257-265. https://doi.org/10.28940/terra.v38i2.620
Cortés, M. M. M. 2003. El cultivo protegido del calabacín. In: Camacho, F. F. (Coord.) Técnicas de producción en cultivos protegidos. Ediciones Agrotécnicas, S.L. España. pp: 723-738.
Cortez-Vega, W. R., Brose, P. I. B., Prentice, C. and Dellinghausen, B. C. 2014. Influence of different edible coatings in minimally processed pumpkin (Cucurbita moschata Duch). International Food Research Journal 21: 2017-2023.
Domínguez, J., Lazcano, C. and Gómez-Brandón, M. 2010. Influence of vermicompost on plant growth. Contributions toward the development of an objective concept. Acta Zoológica Mexicana 2: 359-371.
Molinar, R., Aguiar, J., Gaskell, M. and Mayberry, K. 1999. Summer squash production in California. University of California. Division of Agriculture and Natural Resources. Publication 7245. https://doi.org/10.3733/ucanr.7245
Moreno-Reséndez, A., Reyes-Carrillo, J. L., Preciado-Rangel, P., Ramírez-Aragón, M. G. y Moncayo-Luján, M. R. 2019. Desarrollo de calabacita con diferentes fuentes de fertilización bajo condiciones de invernadero. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios 6 (6): 145-151. https://doi.org/10.19136/era.a6n16.1803
Pérez-Barraza, M. H., Vázquez-Valdivia, V., Osuna-García, J. A. y Urías-López, M. A. (2009). Incremento del amarre y tamaño de frutos partenocárpicos en mango ‘Ataulfo’ con reguladores de crecimiento. Revista Chapingo. Serie Horticultura 15 (2): 183-188.
Piña-Ramírez, F. J., Soto-Parra, J. M., García-Muñoz, S. A., Flores-Plascencia, J. B. y Pérez-Leal, R. 2015. Disminución de la solución nutritiva con aplicaciones de composta en la producción de tomate en invernadero. Revista Científica Biológico-Agropecuaria Tuxpan 3: 928-937.
Ramírez-Luna, E., Castillo-Aguilar, C.C., Aceves-Navarro, E. y Carrillo-Ávila, E. 2005. Efecto de productos reguladores de crecimiento sobre la floración y amarre de fruto en chile ‘Habanero’. Revista Chapingo Serie Horticultura 11 (1): 93-98.
Román-Román, L., Ayala-Tafoya, F., Parra-Delgado, J. M., Díaz-Valdés, T., López-Orona, C. A. y Velázquez-Alcaraz, T. J. 2022. Producción de calabacita con y sin polinización de flores a mano en condiciones de casa malla. Revista Fitotecnia Mexicana 45 (2): 165-172. https://doi.org/10.35196/rfm.2022.2.165
Romero-Romano, C. O., Ocampo-Mendoza, J., Sandoval-Castro, E. y Tobar-Reyes, J. R. 2012. Fertilización orgánica – mineral y orgánica en el cultivo de fresa (Fragaria x ananasa Duch.) bajo condiciones de invernadero. Ra Ximhai 8: 41-49.
Rueda-Luna, R., Reyes-Matamoros, J., Flores-Yáñez, M.C., Romero-Hernández, M. y Marín-Castro, M. A. 2018. Cultivo de sandía diploide injertada en invernadero. Interciencia 43 (3): 198-201.
Sarmiento-Sarmiento, G. J., Pino-Cabana, D., Mena-Chacón, L. M., Medina-Dávila, H. D. y Lipa-Mamani, L. M. 2019. Aplicación de humus de lombriz y algas marinas en el cultivo de sandía (Citrullus lanatus Thunb.) var. Santa Amelia. Scientia Agropecuaria 10 (3): 363–368. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2019.03.06
SIAP. 2021. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Anuario Estadístico de la Producción Agrícola [En línea]. Disponible en www.gob.mx/siap (Agosto 2021).
Soriano-Melgar, L. A., Izquierdo-Oviedo, H., Saucedo-Espinosa, Y. A. y Cárdenas-Flores, A. 2020. Efecto de la aplicación de bioestimulantes sobre calidad y capacidad antioxidante de frutos de calabacita (Cucurbita pepo L. ‘Grey Zucchini’). Terra Latinoamericana 38 (1): 17-28. https://doi.org/10.28940/terra.v38i1.516
StatSoft, Inc. 2004. STATISTICA (data analysis software system), version 7. www.statsoft.com
Steiner, A. A. 1984. The universal nutrient solution. Sixth International Congress on Soilless Culture. Wageningen, The Netherlands. pp: 633-650.
Urías-Orona, V., Muy R. D., Osuna, E. T., Sañudo, B. A., Báez, S. M., Valdez, T. Benigno., Siller C. J. y Campos, S. J. 2012. Estado hídrico y cambios anatómicos en la calabacita (Cucurbita pepo L.) almacenada. Revista Fitotecnia Mexicana 35 (3): 221-228.
USDA (United States Department of Agriculture). 2016. United states standards for grades of summer squash. https://www.ams.usda.gov/grades-standards/summer-squash-grades-and-standards. (Diciembre 2020).
Varela-Delgadillo, O. E., Livera-Muñoz, M., Muratalla-Lúa, A. y Carrillo-Salazar, J. A. 2018. Inducción de partenocarpia en Opuntia spp. Revista Fitotecnia Mexicana 41 (1): 3-11.
Zhao, H. T., Luo, J., Shan, Y. H., Wang, A. L., Liu, P., Feng, K. 2010b. Effects of vermicompost organic-inorganic mixed fertilizer on yield and quality components of cucumber cultivated in greenhouse. Plant Nutrition & Fertilizer Science 16: 1288–1293.
Cheong, K.K.; Strub, C.; Montet, D.; Durand, N.; Alter, P.; Meile, J.C.; Schorr Galindo, S.and Fontana, A. 2016.  Effect of different light wavelengths on the growth and ochratoxin A production   in Aspergillus   carbonariusand Aspergillus westerdijkiae. Fungal   Biol. 120(5):745-751.
Cope, K. R. and Bugbee, B. 2013. Spectral effects of three types of white light-emitting diodes on plant growth and development: absolute versus relative amounts of blue light. HortSci. 4(48):504-509.
Dasgupta, A.; Fuller, K.K.; Dunlap, J.C.  and Loros, J.J.  2016. Seeing the world differently: variability in the photosensory mechanisms of two model fungi. Environ. Microbiol. 18(1):5-20.
Fuller, K.K.; Loros, J.J. and Dunlap, J.C. 2015. Fungal photobiology: visible light as a signal for stress, space and time. Current Genetics.61(3):275-288.
Saltos, L. A., Monteros-Altamirano, Á., Reis, A., Garcés-Fiallos, F. R. (2022). Phytophthora capsici: the diseases it causes and management strategies to produce healthier vegetable crops. Horticultura Brasileira, 40, 5-17.
Zazueta-Torres, N. D., Ayala-Tafoya, F., Gonzáles-Morales, S., Velázquez-Alcaraz, T. de J., Yáñez-Juárez, M. G., y Partida-Ruvalcaba, L. (2021). Crecimiento in vitro de Sclerotium rolfsii en respuesta a la calidad de luz de tres tipos de lámparas fluorescentes. Revista Mexicana De Ciencias Agrícolas, 12(1), 141–147.
Alkahtani, M. D., Alqarawi, A. A., Hashem, A., Abd_Allah, E. F., & Egamberdieva, D. (2023). Synergistic effects of Trichoderma harzianum and chitosan on maize growth and stress tolerance. Plants, 12(7), 1543. https://doi.org/10.3390/plants12071543
Csótó, A., Tóth, G., Riczu, P., Zabiák, A., Tarjányi, V., Fekete, E., Karaffa, L., & Sándor, E. (2024). Foliar spraying with endophytic Trichoderma biostimulant increases drought resilience of maize and sunflower. Agriculture, 14(12), 2360. https://doi.org/10.3390/agriculture14122360
Eftekhari, F., Sarcheshmehpour, M., Lohrasbi-Nejad, A. et al. (2025). Effects of mycorrhizal and Trichoderma treatment on enhancing maize tolerance to salinity and drought stress, through metabolic and enzymatic evaluation. BMC Plant Biol 25, 687. https://doi.org/10.1186/s12870-025-06729-x
SIAP / Gobierno de México (2021). Maíz, cultivo de México. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. Recuperado de https://www.gob.mx/agricultura/es/articulos/maiz-cultivo-de-mexico
DGSIAP, Dirección General del Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. (2024). Anuario estadístico de la producción agrícola: Cierre de la producción agrícola. Gobierno de México. https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Elsheshtawi, M., Elkhaky, M. T., Sayed, S. R., Bahkali, A. H., Mohammed, A. A., Gambhir, D., Mansour, A. S., & Elgorban, A. M. (2017). Integrated control of white rot disease on beans caused by Sclerotinia sclerotiorum using Contans® and reduced fungicide application. Saudi Journal of Biological Sciences, 24(2), 405–409. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2016.01.038
Lehner, M. S., Paula Júnior, T. J., Del Ponte, E. M., Silva, C. N., Mizubuti, E. S. G., & Pethybridge, S. J. (2017). Comparing the fungicide sensitivity of Sclerotinia sclerotiorum using mycelial growth and ascospore germination assays. Plant Disease, 101(6), 986–995. https://doi.org/10.1094/PDIS-07-16-0971-RE
Lehner, M. S., Paula Júnior, T. J., Silva, R. A., Vieira, R. F., Carneiro, J. E. S., Schnabel, G., & Mizubuti, E. S. G. (2015). Fungicide sensitivity of Sclerotinia sclerotiorum: A thorough assessment using discriminatory dose, EC50, high-resolution melting analysis, and description of new point mutation associated with thiophanate-methyl resistance. Plant Disease, 99(11), 1537–1543. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-15-0268-RE
Little, T. M., & Hills, F. J. (1989). Agricultural experimentation: Design and analysis. Wiley-Interscience.
Nieto-Lopez, M., Bradley, C. A., Chilvers, M. I., Mueller, D. S., Smith, D. L., & Kelly, H. M. (2023). Fungicide sensitivity of Sclerotinia sclerotiorum from U.S. soybean and dry bean, compared to different regions and climates. Plant Disease, 107(3), 699–709. https://doi.org/10.1094/PDIS-07-22-1707-RE
Silva, R. A., Lehner, M. S., Paula Júnior, T. J., & Mizubuti, E. S. G. (2024). Fungicide sensitivity of isolates of Sclerotinia sclerotiorum from different hosts and regions in Brazil and phenotypic instability of thiophanate-methyl resistant isolates. Tropical Plant Pathology. https://doi.org/10.1007/s40858-023-00629-x
Yang, J., Pan, Y., Zhu, G., & Zhou, Y. (2004). The resistance mechanisms of Sclerotinia sclerotiorum to carbendazim and diethofencarb. Acta Phytophysica Sinica, 31(1), 74–78.

 
Álvarez, A. B. (2018). El cultivo de Arándano (Vaccinium corymbosum) y su proyección en Colombia. Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales, Facultad de Ingeniería Agronómica.
Calvo, D., y Molina, J. M. (2011). Insectos asociados al cultivo del arándano en Andalucía Occidental. IFAPA, 66-70.
FAOSTAT. (2023). Producción de arandanos: los 10 productores principales. FAO.
Galván, I. R. (2022). Identificación y Biología de Lepidópteros en frutillas: Tesis Doctoral. Colegio de Postgraduados. https://doi.org/http://hdl.handle.net/10521/4923
Korycinska, A., Eyre, D., & Linay, A. (2024). Omnivorous leafroller Platynota stultana. Departament for Environment Food & Rural Affairs, 2.
Bautista, N. M. (2023). Insectos y Ácaros de Importancia Agrícola en Mexíco. Colegio de Postgraduados. https://doi.org/978-607-715-459-4
Powell, J. A., & Brown, J. W. (2012). Tortricidea Tortricida (Part 1). The wegde entomological research foundation , 1, 225.
Rocca, M., & Brown, J. W. (2013). New host records for four species of Tortricid moths (Lepidoptera: Tortricidae) On Cultivated Blueberries, Vaccinium Corymbosum (Ericaceae), In Argentina. Proc. Entomol. Soc. Wash, 2(115), 167–172. https://doi.org/10.4289/0013-8797.115.2.167
Salgado-Vargas, C., Sánchez-García, P., Volke-aller, V. H., y M. T. (2018). Respuesta Agronómica de Arandano (Vaccinium corymbosum L.) al estres osmotico. Agrociencia, 52(2), 231-239.
SIAP. (2024). Anuario Estadístico de la Producción Agricola. Cierre de la producción agricola. Sistema de Información Agroalimentaria y Pesquera.
Velasquez, R., Leiva, A. M., Gil-Ordóñez, A., Perez-Fuentes, L. S., Domínguez, V., & Cuellar, W. J. (2025). An emerging Platynota sp. (Lepidoptera: Tortricidae) infesting blueberry (Vaccinium corymbosum) in the central coast of Peru. Frontiers in insect Science, 5(5:1593907), 1-12. https://doi.org/https://doi.org/10.3389/finsc.2025.1593907.
Bautista-Cruz, M.A., Almaguer-Vargas, G., Leyva-Mir, S.G., Colinas-León, M.T., Correia, K.C., Camacho-Tapia, M., Robles-Yerena, L., Michereff, S.J. and Tovar-Pedraza, J.M. 2019. Phylogeny, Distribution, and Pathogenicity of Lasiodiplodia Species Associated With Cankers and Dieback Symptoms of Persian Lime in Mexico. Published Online: https://doi.org/10.1094/PDIS-06-18-1036-RE
De la Mora-Castañeda, J.G., Cibrián-Tovar, D., Omar A. Pérez-Vera, O.A. 2014. Neofusicoccum eucalyptorum (=Botryosphaeria eucalyptorum) Y N. parvum: Patógenos en plantaciones de eucalipto en méxico. División de Ciencias Forestales (Departamento de Ecología y Silvicultura), Universidad Autónoma Chapingo. 187-197.
FAOSTAT. 2024.Datos sobre alimentación y agricultura. https://www.fao.org/faostat/es/#data
González-Razo, F.J., Rebollar-Rebollar, S., Hernández-Martínez, J., Morales-Hernández, J.L., y Ramírez-Abarca, O. 2019. Situacion actual y perspectivas de la producción de berries en México. Revista Mexicana de Agronegocios. 44. Sociedad Mexicana de Administración Agropecuaria A.C., México. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=14161295012
https://www.gob.mx/agricultura/dgsiap/acciones-y-programas/produccion-agricola-404122
Machado, A.R., Pinho, D.B., Pereira, O.L. 2014. Filogenia, identificación y patogenicidad de las Botryosphaeriaceae asociadas a la pudrición del cuello y la raíz de la planta de biocombustibles Jatropha curcas en Brasil, con una descripción de nuevas especies de Lasiodiplodia. Diversidad fúngica. 67(1):231-247
Morales, A.C.G. 2017. Manual de manejo agronómico del arándano. Instituto de Desarrollo Agropecuario- Instituto de Investigación Agropecuaria. Boletin INIA no. 6.
Netto, M. S. B.; Lima, W. G.; Correia, K. C.; Da Silva, CH. F. B.; Thon, M.; Martins, R. B.; Miller, R. N. G.; Michereff, S. J. and Camara, M. P. S. 2017. Analysis of phylogeny, distribution, and pathogenicity of Botryosphaeriaceae species associated with gummosis of anacardium in Brazil, with a new species of Lasiodiplodia. Fungal Biol. 121(4):437-451. Doi: 10.1016/j.funbio.2016.07.006
O´Gara E., Hardy G.E.S. and Mc Comb J.A. 1996. The ability of Phytophthora cinnamomi to infect trough wounded pe riderm tissue of Eucalyptus marginata. Plant Pathology 45:955-963. dx.doi.org/10.1111/j.1365-3059.1996. tb02906.x
Santillán-Mendoza R., Estrella-Maldonado H., Marín-Oluarte L, Matilde-Hernández C., Rodríguez-Alvarado G., Fernández-Pavía S.P., Flores-de la Rosa F.R. 2024 Phylogenetic and Pathogenic Evidence Reveals Novel Host-Pathogen Interactions between Species of Lasiodiplodia and Citrus latifolia Dieback Disease in Southern Mexico. J Fungi (Basel). 14;10(7):484. doi: 10.3390/jof10070484. PMID: 39057369; PMCID: PMC11278223.
Slippers, B.; Crous, P. W.; Jami F.; Groenewald, J. Z. and Wingfield, M. J. 2017. Diversity in the botryosphaeriales: looking back, looking forward. 2017. Fungal Biol. 121(4):307-321. Doi: 10.1016/j.funbio.2017.02.002.
Aguilar Rincón y Víctor H. (2012). Cultivo de chile en México. Revista fitotecnia mexicana 35 (4). 264. Recuperado el 27 de septiembre de 2020.
http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802012000400001&lng=es&tlng=es
Basu, S. K., & De, A. K. (2003). Capsicum: historical and botanical perspectives. In Capsicum (pp. 21-35). CRC Press.
Doreste, E. (1984). Acarología (No. 11). Bib. Orton IICA/CATIE.
García-Barros, E., Romo, H., i Monteys, V. S., Munguira, M. L., Baixeras, J., Moreno, A. V., & García, J. L. Y. (2015). Orden lepidoptera. Revista IDE@-SEA, 65, 1-21.
Garza, U. E. 2002. Manejo Integrado de las plagas del chile en la Planicie Huasteca. INIFAPCIRNE. Campo Experimental Ébano. Folleto Técnico Núm. 10. San Luis Potosí, México. 47 p.
Gordon, R. D. (1985). The Coccinellidae (Coleoptera) of America north of Mexico. Journal of the New York Entomological Society, 93(1).
Laborde, C. J. A., y C. O. Pozo. 1984. Presente y Pasado del Chile en México. Publicación especial No. 85. Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA). México. 80 p.
Lozano Gutiérrez, J., Salas Montes, J. M., España Luna, M. P., Lara Herrera, A., Balleza Cadengo, J., & Martínez Contreras, C. A. (2018). Entomofauna asociada a seis tipos de chile (Capsicum annum L) en Morelos, Zacatecas, México.
Mason, W. R. (1993). Key to superfamilies of Hymenoptera. Hymenoptera of the World: an identification guide to families. Ottawa, Centre for Land and Biological Resources Research, 65-100.
McAlpine, J. F., Peterson, B. V., Shewell, G. E., Teskey, H. J., Vockeroth, J. R., & Wood, D. M. (1981). Manual of Nearctic Diptera. Volume 1 (No. 27, pp. vi+-674).
Medina Ruíz, M. (2020). Entomofauna asociada al ají tabasco (Capsicum frutescens L.) en épocas húmeda y seca
Mena, C. J. 2006. Estrategia de manejo integrado contra los insectos plaga del chile. Pp. 97-119. In: Tecnología de producción de chile seco. Libro Técnico No. 5. Campo Experimental Zacatecas –INIFAP. 224 p.
Nieves-Aldrey, J. L., Fontal-Cazalla, F., & Fernández, F. (2006). Introducción a los Hymenoptera de la Región Neotropical. Universidad Nacional de Colombia.
Pérez, F. F. (2015). Orden Prostigmata. Revista IDE@-SEA, 14, 1-8.
Ruiz, A. F., Prado, K. V., Bowen, L. S., & Soto, A. C. (2021). Identificación de la entomofauna presente en el cultivo de pimiento (Capsicum annuun L) en el sector Lodana del cantón Santa Ana, Ecuador. Manglar, 18(4), 397-402.
Shannon, C. E. (1948). A mathematical theory of communication. The Bell system technical journal, 27(3), 379-423.
SIAP 2023. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Panorama Agroalimentario 2023 Edición, 2023. https://www.gob.mx/siap/acciones-y-programas/panorama-agroalimentario-258035
Simpson, E. H. (1949). Measurement of diversity. nature, 163(4148), 688-688.
Urbaneja, A., J. L. Ripollés, R. Abad, J. Calvo, P. Vanaclocha, D. Tortosa, J. A. Jacas, y P. Castañeda. 2005. Importancia de los artrópodos depredadores de insectos y ácaros en España. Boletín Sanidad Vegetal Plagas, 31: 209-223.
Agrios, G.N. 2005 Fitopatología. Segunda edición. Editorial LIMUSA. Eds. Grupo noriega. México. D. F. México. 838 pp.
González, V., Portal-Onco, M. A., Rubio-Susan, V. 2006. Review. Biology and systematics of the form Genus Rhizoctonia», Spanish Journal of Agricultural Research 4 (1):55-79. Rhizoctonia.pdf
Index Mundi. 2023. Global corn production statistics. Consultado en 2025. https://www.indexmundi.com
Muyolo, N.G. 1993. Reacciones de cultivares de frijol seco, frijol Lima y soja a la pudrición de la raíz y el hipocótilo por Rhizoctonia y al tizón de la red. Planta Dis. 77: 234-238. DOI: 10.1094/PD-77-0234.
Perdomo, R., Hernández, A., González, A., Pineda, J., Alezones, J. 2007. Caracterización y evaluación de virulencia en aislamientos de Rhizoctonia solani Kuhn, causante de la mancha bandeada en maíz. Interciencia 32:48-55. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=33932108
Servicio de información agroalimentaria y pesquera, México (SIAP). 2024. Producción agrícola anual. Consulta, septiembre del 2025. http://www.siap.gob.mx/cierre-de-la-produccion-agricola-por-estado/.
White, T. J., T. D. Bruns, S. B. Lee, and J. W. Taylor. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA Genes for phylogenetics. https://www.researchgate.net/publication/223397588_
Yang, Y. G., Zhao, C., Guo, Z. J., and Wu, X. H. (2014). Anastomosis groups and pathogenicity of binucleate Rhizoctonia isolates associated with stem canker of patato in China. Journal of Plant Pathology 139:535-544.
Zadoks, J. C. and Schein, R. D. 1979. Epidemiology and plant disease management. Oxford University Press. 427 p.
Finney, D. J., Ed. (1952). Probit Analysis. Cambridge, England, Cambridge University Press.
Hayes, W. J. and C. L.Kruger(eds).2014 Handbook of Haye’s principles and methods of toxicology, 6th Edition, CRC Press, Boca Raton, NY.
Kapogu, A.R. (2021) Finney´s probit analysis spreadsheet calculator (version 2021).
Lule, L. Y. (2024). Uso de hongos entomopatógenos en el control biológico del picudo del chile (Anthonomus eugenii Cano). Instituto Tecnológico Superior de Salvatierra. Tecnológico Nacional de México.
SADER (2025). Anuario Estadístico de la Producción Agrícola (DGSIAP). https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Sanidad Vegetal (2025). Manual Técnico para el Manejo Integrado del Picudo del Chile ((Anthonomus eugenii) Cano 1894.  https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/998312/MANUAL_TECNICO_PICUDO_DEL_CHILE_compressed.pdf
Barnett L. H. and Hunter B. B., 1972. Illustrated Genera of imperfect fungi. Editorial, Burgess Publishing Company, United States of America. Pp. 241.
Carlson M. G., Gaussoin R. E. and  Puntel L. A. 2022. A review of precision management for golf course turfgrass. Crop Forage & Turfgrass Mgmt. 8:e20183. 1-11. DOI: 10.1002/cft2.20183.
Expogolf, 2025. El golf en México: Motor de crecimiento económico y oportunidades de negocios en Latinoamerica. https://expogolfmexico.com.mx/el-golf-en-mexico-motor-de-crecimiento.
Flores-Regules A., Vargas-Martínez E. E. y López-Moredasmo L. J. 2016. Turismo de golf en México: consideraciones ambientales para su desarrollo. Revista Internacional de Economía y Gestión de las Organizaciones, ISSN 2254-1608. Volumen 2 (1): 1-44.
Peng Y., Li S. J., Yan J., Tang Y., Cheng J. P., Gao A. J., Yao X., Ruan J. J. and Xu B. L. 2021. Research Progress on Phytopathogenic Fungi and Their Role as Biocontrol Agents. Front. Microbiol. 12:670135.
Pradeep F.S., B.M. Shakila M. Palaniswamy and B. V. Pradeep.  2013. Influence of Culture Media on Growth and Pigment Production by Fusarium moniliforme KUMBF1201 Isolated from Paddy Field Soil. World Applied Sciences Journal 22 (1):70-77.
Ruiz-Hernández L. G. 2021. Manual, Programa sectorial de Turismo 2015-2021. Gobierno de Baja California Sur, Pp 1-44. https://finanzas.bcs.gob.mx/.
Sánchez-Arce O. J., Palacios-Espinosa A., Carillo-Fasio J. A., Hernández-Montiel L. G., Hernández-Rubio J. S. y Romero-Bastidas M. 2021. Diversidad y distribución de nematodos fitoparásitos en campos de golf en localidades de Baja California Sur, México. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 38(3): 651-660.
Stackhouse T., Martínez-Espinoza A. D. and Ali M. D. E. 2020. Turfgrass Disease Diagnosis: Past, Present, and Future. Plants, 9(11): 1544; https://doi.org/10.3390/plants9111544.
Ávila Perches, M.A; Gámez Vázquez, J.A; Zamora Díaz, M.R; Gámez Vázquez, F.P. y Gómez-Espinoza, J (2024). Rendimiento y características agronómicas de cebada con riego normal y restringido. In Memoria de la XXXVI Semana Internacional de Agronomía Facultad de Agricultura y Zootecnia, Venecia, Dgo. pág. 966-972.
Barnett, H., & Hunter, B. (1972). Illustrated genera of imperfect fungi. (3a ed). Minneapolis, Burgess. Pub. Co.
Castillo, L. (2003). Introducción a la Estadística Experimental. (4ta ed.). Universidad Autónoma Chapingo.
Gilchrist, S.L. (2000). Problemas fitosanitarios de los cereales de grano pequeño en los Valles Altos de México. Revista Mexicana de Fitopatología 18:132-137.
International Seed Testing Association. (ISTA). (1985). International Rules for Seed Testing. Anexes. Seed Science & Technology 13:299-355.
Nicholson, P., Chandler, E., Draeger, R.C., Gosman, N.E., Simpson, D.R., Thomsett, M., Wilson, A.H., (2003). Molecular tools to study epidemiology and toxicity of Fusarium head blight of cereals. European Journal of Plant Pathology 109, 691-703
Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). (2024). Consultado en: www.siap.gob.mx
Villaseñor, M. & Espitia, R. (2000). El trigo de temporal en México. Chapingo, Estado de México. México.
Warham, E., Butler, D., & Sulton, B.C. (1998). Ensayos para la Semilla de Maíz y Trigo: Manual de laboratorio. Centro Internacional de Mejoramiento de Maíz y Trigo. (CIMMYT).
Wiese, M. (1987). Compendium of Wheat Diseases. (2da ed) The American Phytopathological Society.
Zillinsky, F. (1984). Enfermedades comunes de los cereales de granos pequeños. Una guía para su identificación. Centro Internacional de Mejoramiento de Maíz y Trigo (CIMMYT).
Abbott, W.S. (1925). A method of computing the effectiveness of insecticide. Journal Economic Entomology; 18: 265-267.
Castillo, S.L.E., Jiménez, O. J.J. y Delgado, H.A.M. (2010). Secondary metabolites of the Annonaceae, Solanaceae and Meliaceae families used as biological control of insects. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 12: 445 -462.
Doumbia, M., Douan, B.G., Kwadjo, K.E., Kra, D.K., Martel, V. and Doumbia, D. (2014). Effectiveness of diatomaceous earth for control of Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae), Tribolium castaneum and Palorus subdepressus (Coleoptera: Tenebrionidae). J. Stored Prod. Res. 57 (1) 1-5.
Fawzy I. E., Nour El-Hoda A. Z., Mohamed, Y. H. and A. Sayeda. (2014). Insecticidal efficacy of certain bio-insecticides, diatomaceous earth and modified atmospheres against Rhyzopertha dominica (F.) (Coleoptera: Bostrichidae) on stored wheat. J. Stored Prod. Res. 57 (1) 30-35. 
García, F.G.F., Ramírez, D.M., Torres, Z.R., Pinto, V.M. y A.S. Ramírez. (2009). Agentes de control biológico de plagas de granos almacenados. Revista Chapingo Serie Zonas Áridas. 8:49-56.
Halstead, D. G. H. (1963). External sex differences in stored products coleoptera. Bull. Entomol. Res 54: 119-134.
Mazzuferi, V.E., Goncalvez, R.H., Tablada, M. y D. García.(2006). Efectividad y persistencia de la tierra de diatomeas en el control de Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae) en semillas de maíz y su incidencia en la calidad. Bol.San. Veg. Plagas 32: 363-371.
Salvadores, Y.U., Silva, G. A., Tapia, M. V. y R. Hepp, G. (2007). Polvos de Especias Aromáticas para el Control del Gorgojo del Maíz, Sitophilus zeamais Motschulsky, en Trigo Almacenado. Agricultura Técnica 67(2):147-154.
SAS. (2009). Statistical Analysis System Institute, North Carolina USA v.9.2.
Contreras-Liza, S. & Vargas-Luna, L. (2022). Use of acetylsalicylic acid and agronomic performance of potatoes in Lima region. CABI Agriculture and Bioscience, 3(1):19. https://doi.org/10.1186/s43170-022-00088-5
Etesami, H. & Jeong, B. R. (2018). Silicon (Si): Review and future prospects on the action mechanisms in alleviating biotic and abiotic stresses in plants. Ecotoxicology and environmental safety, 147:881-896. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2017.09.063
Johnson, S. N., Chen, Z. H., Rowe, R. C. & Tissue, D. T. (2022). Field application of silicon alleviates drought stress and improves water use efficiency in wheat. Frontiers in Plant Science, 13:1030620. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.1030620 
Khan, W., Prithiviraj, B. & Smith, D. L. (2003). Photosynthetic responses of corn and soybean to foliar application of salicylates. Journal of plant physiology, 160(5):485-492. https://doi.org/10.1078/0176-1617-00865
Ma, J. F., Miyake, Y. & Takahashi, E. (2001). Silicon as a beneficial element for crop plants. Studies in plant Science, 8:17-39. https://doi.org/10.1016/S0928-3420(01)80006-9 
Soliman, M. H., Alayafi, A. A., El Kelish, A. A. & Abu-Elsaoud, A. M. (2018). Acetylsalicylic acid enhance tolerance of Phaseolus vulgaris L. to chilling stress, improving photosynthesis, antioxidants and expression of cold stress responsive genes. Botanical studies, 59(1):1-17. https://doi.org/10.1186/s40529-018-0222-1
Thimmappa, P. & Nagabovanalli B. P. (2021). Yield, Quality and Nutrient Content of Tomato in Response to Soil Drenching of Silicic Acid. Agricultural Research, 1-11. https://doi.org/10.1007/s40003-020-00526-8
Tucuch-Haas, C. J., Angulo-Castro, A., Tucuch-Haas, J. I., Mejia-Delgadillo, M. A., & López-Orona, C. A. (2021). Use of Aspirine® (Acetylsalicilico acid) in the yield of grain of corn crop. Revista bio ciencias, 8. https://doi.org/10.15741/revbio.08.e1035
Calero Hurtado, A., Pérez Díaz, Y., Quintero Rodríguez, E., Olivera Viciedo, D., & Peña Calzada, K. (2019). Efecto de la aplicación asociada entre Rhizobium leguminosarum y microorganismos eficientes sobre la producción del fríjol común. Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 20(2), 295–308.
Cabrera Romero, Y. L., Santana Baños, Y., & Miranda Izquierdo, E. (2017). Efecto de la inoculación de Rhizobium sobre el crecimiento de Phaseolus vulgaris en condiciones semicontroladas. Avances, 19(1), 66–74.
Cantaro-Segura, H., Huaringa-Joaquín, A., & Zúñiga-Dávil, D. (2019). Efectividad simbiótica de dos cepas de Rhizobium sp. en cuatro variedades de frijol (Phaseolus vulgaris L.) en Perú. Idesia (Arica), 37(4), 73–81. https://doi.org/10.4067/S0718-34292019000400073
Cruz, R. (s/f). Aprovechamiento de residuos orgánicos a través de composteo y lombricomposteo. UAAAN, Departamento de Fitomejoramiento.
Granda Mora, K. I., Colás Sánchez, A., Gutiérrez Sánchez, Y., Cupull Santana, R., Alvarado Capó, Y., & Torres Gutiérrez, R. (2016). Efecto de aislados de Rhizobium sobre parámetros fenotípicos y la fijación de nitrógeno en genotipos de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Centro Agrícola, 43(1), 62–70. Recuperado de http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0253-57852016000100009
López-Alcocer, J. J., Lépiz-Ildefonso, R., González-Eguiarte, D. R., Rodríguez-Macías, R., & López-Alcocer, E. (2020). Eficiencia en fijación biológica de nitrógeno de cepas de Rhizobium spp. recolectadas en frijol cultivado y silvestre. Terra Latinoamericana, 38(4), 841–852. https://doi.org/10.28940/terra.v38i4.654
Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts: polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24(1), 1–15. https://doi.org/10.1104/pp.24.1.1
Carter, G. A., & Knapp, A. K. (2001). Leaf optical properties in higher plants: Linking spectral characteristics to stress and chlorophyll concentration. American Journal of Botany, 88(4), 677–684. https://doi.org/10.2307/2657068
Fernández, T. (2010, abril 19). Propiedades y beneficios de la clorofila. Vix. https://www.vix.com/es/imj/salud/2010/04/19/propiedades-y-beneficios-de-la-clorofila
Lichtenthaler, H. K., & Wellburn, A. R. (1983). Determinations of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents. Biochemical Society Transactions, 11(5), 591–592. https://doi.org/10.1042/bst0110591
Mathews, K. C., Van Holde, K. E., Appling, D. R., & Spencer, J. A. (2013). Bioquímica (pp. 678–679). Pearson Education.
Maxwell, K., & Johnson, G. N. (2000). Chlorophyll fluorescence—a practical guide. Journal of Experimental Botany, 51(345), 659–668. https://doi.org/10.1093/jexbot/51.345.659
Ruiz Santiago, F. L., Ruiz Velázquez, J. A., Hernández Becerra, J. A., García Jiménez, R., & Valadez Villarreal, A. (2019). Extracción y cuantificación de clorofila en hojas comestibles del estado de Tabasco. Investigación y Desarrollo en Ciencia y Tecnología de Alimentos, 4, 891–896.
Sachdchina, T.M. y V.V. Dimitrieva. 1995. Contenido de clorofila en las hojas como posible medio de diagnóstico para la evaluación de la absorción de nitrógeno por las plantas desde el suelo. Plant Nutr. 18: 14271437.
Saini, D., Singh, G., & Kant, A. (2022). A comparative study on estimation methods for efficient extraction of chlorophyll a and carotenoids using different solvents. Botany and Plant Analysis Science, 1(1), 23–31. https://doi.org/10.25081/bpasbot.2022.v1.8344
Senthilkumar, M., Amaresan, N., & Sankaranarayanan, A. (2020). Determination of chlorophyll. In Plant-microbe interactions (pp. 145–146). Springer Protocols Handbooks. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1080-0_37.
Bassanezi R. B., Montesino, L. H. and Stuchi, E. S. 2009. Effects of Huanglongbing on Fruit Quality of Sweet Orange Cultivars in Brazil. European Journal of Plant Pathology 25:565-572.
Cristobal A. J., Mora, A. G., Manzanilla, L. R. H., Marbán, M. N., Sánchez, G. P., Cid del Prado, V. I. y Evans, K. 2006. Epidemiology and integrated control of Nacobbus aberrans on tomato in Mexico. Nematology 8: 727-737.
Flores- Sánchez, J.L., Mora-Aguilera, G., Loeza-Kuk., Domínguez-Monge, S.,         Acevedo-Sánchez,. G., López-Arroyo, J I. y Robles-García, P 2015. Perdidas en producción inducidas por Candidatus Liberibacter Asiaticus en Limón Persa en Yucatán México. Revista mexicana de fitopatología 33: 195-2010.
Gottwald, T. R., da Graca J.V., and Bassanezi, R. B. 2007. Citrus Hunglongbing: The pathogen and its impact. Online. Plant healt progress doi:10.1094/PHP-   2007-0906-01-RV
Gottwald. T.R 2010. Current Epidemiological Understanding of citrus Huanglongbing. Anual Review of phatology  48:119-139. 
Hung, S. C. 2006. Ecology and Vectorship of Citrus Psyllid in Relation to the Prevalence of Citrus Huanglongbing. PhD. Thesis, NTU, 164 pp. 
Robles, G., Orozco, S., Manzanilla, R., Velázquez, M. y Carrillo, M. 2017. Efecto del HLB sobre el rendimiento de limón mexicano en Colima, México Revista Mexicana en Ciencias Agrícolas Vol.8 Núm.5 p. 1101-1111.
Saavedra, O. 2022. Impacto productivo de Candidatus Liberibacter asiaticus en limón persa cultivado en altas densidades en el Estado de Veracruz pág 34. 
SADER. 2025. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural (SADER). https://www.gob.mx/agricultura/acciones-y-programas/tramites-y-servicios-sagarpa
SENASICA. 2019. Servicio nacional de sanidad, inocuidad y calidad agroalimentaria. ficha técnica huanglongbing ‘Candidatus Liberibacter spp.’ Servicio nacional de sanidad, inocuidad y calidad agroalimentaria dirección general de sanidad vegetal. 5-9 pp.
SIAP, 2025. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. https://nube.agricultura.gob.mx/agroprograma/
Abastida, U. J. A. (1999). Evaluación de la incidencia de aflatoxinas en dos variedades de maíz (Zea mays) en Zamorano. ZAMORANO Departamento de Agronomía.
Camarillo, P. M. 2022. Evaluación de 16 cultivares de maíz (10 blancos y 6 amarillos) en el Valle de Mexicali, Baja California. P-V. 2022. Valle de Mexicali, B. C. Reporte técnico en el archivo del CEMEXI. SAGARPA-INIFAP-CIRNO-CEMEXI.
Camarillo, P. M., Avila, C. E. (2023). Maíz blanco de primavera en los valles de Mexicali, B. C. y San Luis, Río Colorado, Son. Desplegable para productores Núm. 100. SADER-INIFAP-CIRNO-CEMEXI
Palacios, R. N. (2022). Combinan tecnologías para combatir aflatoxinas. https://www.cimmyt.org/es/noticias/combinan-tecnologias-para-combatir-aflatoxinas/. Página consultada el 19 de septiembre de 2025.
Secretaria de Agricultura y Desarrollo Rural. Representación en Baja California Distrito de Desarrollo Rural 002, Rio Colorado. (2016). «Estadistica DDR002» <rcestadistica@bc.agricultura.gob.mx>.
Secretaria de Agricultura y Desarrollo Rural. Representación en Baja California Distrito de Desarrollo Rural 002, Rio Colorado. (2019). «Estadistica DDR002» <rcestadistica@bc.agricultura.gob.mx>.
Secretaria de Agricultura y Desarrollo Rural. Representación en Baja California Distrito de Desarrollo Rural 002, Rio Colorado. (2024). «Estadistica DDR002» <rcestadistica@bc.agricultura.gob.mx>.
Valenzuela, P. J. A. García, M. L., López, L. F., Guzmán, R. S. D., (2002). Guía para producir maíz para grano en el valle de Mexicali, B. C. y  San Luis, Río Colorado, Son. Folleto para productores núm. 36. SAGARPA-INIFAP-CIRNO-CEMEXI
Literatura citada
Ávila, CE; Ochoa, EXM: Montoya, CL; Aguilera, MNA; Borbón, GA y Alvarado, PJI. (2017). Chey-ol: nueva variedad de cártamo oleica para el noroeste de México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 8(5): 1209-1212.
Camarillo, PM; Machain, LM y Guzmán, RSDC. (1983). Guía para producir cártamo en el Valle de Mexicali. Folleto para productores núm. 6. 16p.
Montoya, C. L. y Ochoa, F. B. (2006). Guía para producir cártamo en el sur de Sonora. INIFAP-CIRNO-CESS, Cd. Obregón Sonora. Folleto para productores núm. 37. 24 p.
Siap (2025). Estadística de Producción Agrícola 2025.
Ochoa, EXM; Aguilera, MNA; Montoya, CL; García, BEH; Cota, BCI; Ávila CE; Borbón, GA; y Marroquín, MJA. (2024). Huatson ol, nueva variedad de cártamo del tipo oleico. Rev. Fitotec. Mex. Vol. 47 (4): 421-423, 2024
Arif, M. A. R., Komyshev, E. G., Genaev, M. A., Koval, V. S., Shmakov, N. A., Börner, A., & Afonnikov, D. A. (2022). QTL analysis for bread wheat seed size, shape and color characteristics estimated by digital image processing. Plants, 11(16), 2105. https://doi.org/10.3390/plants11162105
Fazel-Niari, Z., Afkari-Sayyah, A. H., Abbaspour-Gilandeh, Y., Herrera-Miranda, I., Hernández-Hernández, J. L., & Hernández-Hernández, M. (2022). Quality assessment of components of wheat seed using different classifications models. Applied Sciences, 12(9), 4133. https://doi.org/10.3390/app12094133
Haghshenas, A., Emam, Y., & Jafarizadeh, S. (2022). Wheat grain width: A clue for re-exploring visual indicators of grain weight. Plant Methods, 18(1), 58. https://doi.org/10.1186/s13007-022-00891-1
Hakeem, S., Ali, Z., Saddique, M. A. B., Habib-Ur-Rahman, M., & Wiehle, M. (2025). Harnessing genetic diversity in wheat to enhance grain nutrition and yield for biofortification breeding. Biological Research, 58(1), 33. https://doi.org/10.1186/s40659-025-00606-5
Liang, J., Chen, J., Zhou, M., Li, H., Xu, Y., Xu, F., Yin, L., & Chai, X. (2024). An intelligent detection system for wheat appearance quality. Agronomy, 14(5), 1057. https://doi.org/10.3390/agronomy14051057 
Liang, N., Sun, S., Yu, J., Taha, M. F., He, Y., & Qiu, Z. (2022). Novel segmentation method and measurement system for various grains with complex touching. Computers and electronics in agriculture, 202, 107351. https://doi.org/10.1016/j.compag.2022.107351
Sharma, R., Kumar, M., & Alam, M. S. (2021). Image processing techniques to estimate weight and morphological parameters for selected wheat refractions. Scientific Reports, 11(1), 20953. https://doi.org/10.1038/s41598-021-00081-4
Whan, A. P., Smith, A. B., Cavanagh, C. R., Ral, J. P. F., Shaw, L. M., Howitt, C. A., & Bischof, L. (2014). GrainScan: a low cost, fast method for grain size and colour measurements. Plant methods, 10(1), 23. Recuperado de https://plantmethods.biomedcentral.com/articles/10.1186/1746-4811-10-23
Badri, A. M., Garbi, M. I., Gmaraldeen, S. M., Magzoub, A. A., Ibrahim, I. T., Saleh, M. S., Kabbashi, A. S., & Mohamed, S. G. (2017). Antioxidant activity and phytochemical screening of Prosopis juliflora leaves extract. Advancement in Medicinal Plant Research, 5(3), 37–40.
 Bohórquez-Medina, Y. A., Ríos-Castillo, A. G., & Vargas-Arispuro, I. (2025). Traditional culinary uses, food applications, and potential health benefits of Peruvian Mesquite (Prosopis juliflora and Prosopis pallida): Research advances and challenges – A review. International Journal of Gastronomy and Food Science, 33, 100808.
 Caballero, J., Cortés-Zárraga, L., Mapes, C., et al. (2023). Ethnobotanical knowledge in Mexico: Use, management, and other interactions between people and plants. In Ethnobotany of the Mountain Regions of Mexico (pp. 25-63). Springer.
Cavalcante, B. R. F., Andrade, M. M., Ribeiro, D. T., & Lima, J. R. (2022). Mesquite (Prosopis juliflora) grain flour: New ingredient with bioactive, nutritional and physical-chemical properties for food applications. Food Research International, 161, 111869.
Chacón Gurrola, L. R., Chávez-Martínez, A., Rentería-Monterrubio, A. L., & Rodríguez-Figueroa, J. C. (2017). Proteínas del lactosuero: usos, relación con la salud y bioactividades. Interciencia, 42(11), 712–718. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=33953499002
De Lemos, J. E. R., Santos, C. L. A., Silva, J. R. A., & Lima, M. S. (2023). Nutritional, bioactive and health potential of Prosopis juliflora pods and seeds: A review. Journal of the Science of Food and Agriculture, 103(11), 5678–5689.
Espinoza-Pérez, J., Cortina-Villar, S., Perales, H., Méndez-Flores, O. G., & Soto-Pinto, L. (2024). Edible plants as a complement to the diet of peasant farmers: A case study of the Totonacapan region of Puebla, Mexico. Frontiers in Sustainable Food Systems, 8, 1329532.
Gusmão, Cavalcanti-Mata, (2016). Particle size, morphological, rheological, physicochemical characterization and designation of minerals in mesquite flour Journal of Cereal Science, 69, 119–124. https://doi.org/10.1016/j.jcs.2016.02.017
Knez, M., Ranić, M., & Gurinović, M. (2023). Underutilized plants increase biodiversity, improve food and nutrition security, reduce malnutrition, and enhance human health and well-being: Let’s put them back on the plate. Nutrition Reviews, 82(8), 1111–1124.
Prokopidis, K., Morgan, P. T., Veronese, N., Morwani-Mangnani, J., Triantafyllidis, K. K., Kechagias, K. S., Roberts, J., Hurst, C., Stevenson, E., Vlachopoulos, D., & Witard, O. C. (2025). The effects of whey protein supplementation on indices of cardiometabolic health: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Clinical Nutrition, 44(8), 109–121. https://doi.org/10.1016/j.clnu.2024.12.003
Rebman, J. P., Roberts, N. C., & Felger, R. S. (2016). Annotated checklist of the vascular plants of Baja California, Mexico. San Diego Natural History Museum.
Rizvi, N. B., Fatima, A., Busquets, R., Khan, M. R., Ashraf, S., Khan, M. S., & Oz, F. (2023). Effect of the media in the Folin–Ciocalteu assay for the analysis of the total phenolic content of olive products. Food Analytical Methods, 16, 1627–1634. https://doi.org/10.1007/s12161-023-02527-z
Villaseñor, J. L. (2016). Checklist of native vascular plants of Mexico. Revista Mexicana de Biodiversidad, 87(3), 459-902.
AbdulBasser, A. R., & El-All, E. E. H. A. (2025). Vermicompost and biochar improve yield, yield components and fruit quality of Seewy date palm variety. SVU International Journal of Agricultural Sciences, 7(2), 150–160. https://doi.org/10.21608/svuijas.2025.361608.1440
Adekiya, A. O., Agbede, T. M., Ejue, W. S., Aboyeji, C. M., Dunsin, O.,  Aremu, C. O. (2020). Green manures and NPK fertilizer effects on soil properties, growth, yield, mineral and antioxidant content of tomato. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 19(2), 107–113. https://doi.org/10.1016/j.jssas.2018.08.004
Ahmed, M. A., Hassan, R. A., & El-Sayed, F. H. (2024). Impact of organic and biofertilizers on growth, yield and fruit quality of date palm (Phoenix dactylifera L.). Journal of Applied Agricultural Research, 16(3), 112–125. https://doi.org/10.1016/j.jaar.2024.07.005
El-Mageed, T. A. A., Semida, W. M., Rady, M. M. (2018). Moringa leaf extract as biostimulant improves water use efficiency, physio-biochemical attributes of squash plants under deficit irrigation. Agricultural Water Management, 193, 46–54. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2017.08.004
El-Salhy, M., Badawy, A., Gadalla, E., & Hassan, H. (2021). Effect of organic and bio-fertilization on growth and fruiting of Sakkoty date palm. Assiut Journal of Agricultural Sciences, 52(1), 90–102. https://doi.org/10.21608/ajas.2021.172108
Gogoi A., Biswas S., Bora J., Sundar S., Sundar S. y Kumar M. (2015). Effect of vermicomposting on copper and zinc removal in activated sludge with special emphasis on temporal variation. Ecohydrol. Hydrobiol. 15 (2), 101-107. DOI: 10.1016/j.ecohyd.2015.01.001
Hakimi, F., Sebbar, A., Bouamri, R., Sidikou, A. A. H., El Janati, M., & Bouaziz, A. (2024). Effects of compost and compost tea on soil properties and nutrient uptake of the Moroccan date palm cultivar “Mejhoul” under organic cultivation. Journal of Ecological Engineering, 25(7), 224–240. https://doi.org/10.12911/22998993/188334
Morales-Maza, A., Mendoza-Gómez, A., Cabada-Tavares, C. A., Beleño-Cabarcas, M. T., Torres-Ramos, R., & Cervantes-Díaz, L. (2024). Response to chemical and organic fertilization in date palm (Phoenix dactylifera L.) Mejhoul variety in Northwestern Mexico. Agro Productividad. Advance online publication. https://revista-agroproductividad.org
Oufdou, K., Benali, S., & Laamari, R. (2021). Organic amendments in date palm cultivation: Effects on soil properties and fruit quality over successive seasons. Scientia Horticulturae, 282, 110001. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2021.110001
Scotti, R., Bonanomi, G., Scelza, R., Zoina, A., & Rao, M. A. (2015). Organic amendments as sustainable tool to recovery fertility in intensive agricultural systems. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 15(2), 333–352. https://doi.org/10.4067/S0718-95162015005000031
Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. (2024). Anuario estadístico de la producción agrícola. Dirección General del Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/
Abobatta, W. (2018). Impact of hydrogel polymer in agricultural sector. Advances in Agriculture and Environmental Science, 1(2), 59-64. DOI: 10.30881/aaeoa.00011
Ahmad, A., Ordoñez García, J., Alexopoulos, A., Koutras, K., Kalogeras, A., Stefanidis, K., & Martos Núñez, V. (2024). Agricultura 4.0: Integrando blockchain para una producción más eficiente y sostenible. Revista Internacional de Innovación Agrícola, 15(2), 45–62. https://hdl.handle.net/10481/90630
Albores, J., Cruz, M., Llanes, J., Carrasco, E., Vázquez, V., & Cárdenas, N. (2024). Avances y perspectivas de la agricultura de precisión para la sostenibilidad agrícola. XIKUA Boletín Científico de la Escuela Superior de Tlahuelilpan, 12(24), 1–6.
Comisión Nacional del Agua [CONAGUA]. (2020). Atlas del agua en México 2020. Gobierno de México. https://www.gob.mx/conagua
Instituto Mexicano de Tecnología del Agua [IMTA]. (2020). Eficiencia en el uso del agua en la agricultura de riego en México. https://www.imta.gob.mx
Ortiz, T., Rapado, M., & Peniche, C. (2021). Hidrogeles superabsorbentes basados en poliacrilamida para aplicación agrícola: estudio de hinchamiento. Revista Cubana de Química, 33(2), 46–68.
Pedrozo, A. (2022). Perspectivas IMTA (No. 22). Instituto Mexicano de Tecnología del Agua. https://doi.org/10.24850/b-imta-perspectivas-2022-22
Rathore, S., Shekhawat, K., & Singh, R. (2020). Influence of water and nutrient management on growth and yield of Capsicum annuum under protected cultivation. Journal of Applied and Natural Science, 12(2), 234–241.
Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera [SIAP]. (2024). Panorama agroalimentario 2018–2024. Gobierno de México. https://www.gob.mx/siap/acciones-y-programas/panorama-agroalimentario-258035
Castresana, J. E. y Puhl, L. 2018. Eficacia de insecticidas botánicos sobre Myzus persicae (Sulzer) y Aphis gossypii (Clover) (Hemiptera: Aphididae) en el cultivo de pimiento (Capsicum annuum L.) bajo cubierta. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 136-146. https://doi.org/10.17584/rcch.2018v12i. 
Cocón, C, G. 2003. Extractos de ajo para reducir las poblaciones de mosquita blanca Bemisia tabaci Geen. en calabacita (Cucurbita pepo L.). Tesis de Licenciatura. Universidad Autónoma de Chapingo, Texcoco, México. 39 p.
Fernández, J.A., Ghiggia, L.I., Macian, A.J., Arce, O., Jaime, A.P. y M.R. Paz. 2013. Dos sistemas de manejo de un cultivo comercial de pimiento (Capsicum annum L.) bajo carpa plástica para el control de Bemisia tabaci G., en Lules, Tucuman. Revista Agronomía N.O. Argentina, 33 (1): 21-24.
Flores, A.L., Geraud, P.F., Chirinos, D. y L. Meléndez, R. 2015. Efectividad de algunos insecticidas para el control de Bemisia tabaci (Gennadius) en tomate, Solanum lycopersicum L. Revista Interciencia, Volumen 40 (2): 121-125.
García, V. V., Soto, A.G. y T. Bacca. 2014. Efecto insecticida de productos alternativos en Trialeurodes vaporariorum (Hemiptera-Aleyrodidae). Revista Colombiana de Entomología, Vol. 40, Número 2: 143-147.
Santiago, V. S. C. Rodríguez H; L. D. Ortega A; D. Ochoa M. y S. Infante G. 2009. Repelecian de adultos de mosca blanca Trialeurodes vaporariorum West.) con aceites esenciales. Fitosanidad v. 13 n. 1 Ciudad de la Habana
SAS. 2009. Statistical Analysis System Institute, North Carolina USA v.9.2.
SIAP. 2025. Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. En:  https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/. Accesada el 20 de septiembre de 2025.
Akter, A., Li, X., Grey, E., Wang, S. C., & Kebreab, E. (2025). Grape pomace supplementation reduced methane emissions and improved milk quality in lactating dairy cows. Journal of Dairy Science, 108(3), 2468-2480. https://doi.org/10.3168/jds.2024-25419
Buican, B. C., Luchian, C. E., Colibaba, L. C., Niculaua, M., Bordean, M. E., Kallithraka, S., & Cotea, V. V. (2025). Aroma Compounds from Grape Pomace: Investigation of Key Winemaking Factors for Future Extraction Applications—A Review. Horticulturae, 11(3), 302. https://doi.org/10.3390/horticulturae11030302
EC-European Commission. (2002). Directive 2002/32/EC of the European Parliament and of the Council of 7 May 2002 on undesirable substances in animal feed. Luxemb Off J Eur Union, 140, 10-22. https://eur-lex.europa.eu/LexUriServ/LexUriServ.do?uri=CONSLEG:2002L0032:20061020:EN:PDF
Eder, K., Ringseis, R., & Gessner, D. K. (2025). Effects of Grape By-Products on Oxidative Stress and Inflammation in Farm Animals: An Overview of Studies Performed in Pigs, Chickens, and Cattle. Animals, 15(11), 1536. https://www.mdpi.com/2076-2615/15/11/1536
Eghtedari, M., Khezri, A., Kazemi-Bonchenari, M., Mohammadabadi, M., Mahani, S. E., & Aschenbach, J. R. (2025). Phosphorus has a crucial role in growth performance of calves fed starters with incorporated forage. Animal Nutrition. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2025.01.012
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). Shaping the future of livestock. Sustainably, responsibly, efficiently. http://www.fao.org/3/i8384en/I8384EN.pdf, 2018 (acceso septiembre 2025).
Galvez-Lopez, M., Navarro, A., Muelas, R., Roca, A., Peris, C., Romero, G., & Díaz, J. R. (2025). Potential of Baled Silage to Preserve White Grape Pomace for Ruminant Feeding. Agriculture, 15(9), 974. https://doi.org/10.3390/agriculture15090974
López-Astorga, M., Molina-Domínguez, C. C., Ovando-Martínez, M., & Leon-Bejarano, M. (2023). Orujo de Uva: Más que un Residuo, una Fuente de Compuestos Bioactivos. EPISTEMUS, 16(33), 115–122. https://doi.org/10.36790/epistemus.v16i33.283
Mena, M. O., Trevise, G. G., Silva, T. N., Moellmann, V. M., Bassetto, C. C., Gatti, B. S., … & Amarante, A. F. (2025). Evaluation of Grape Pomace Supplementation in Lamb Diets to Mitigate Haemonchus contortus Infection. Agriculture, 15(3), 341. https://doi.org/10.3390/agriculture15030341
SADER, 2022 https://www.gob.mx/agricultura%7Cbajacalifornia/articulos/generaron-productores-de-vid-de-baja-california-derrama-economica-superior-a-los-595-mdp
Tzintzun-Camacho, O., Hernández-Jiménez, V., González-Mendoza, D., Pérez-Pérez, J.P., Troncoso-Rojas, R., Duran-Hernández, D., Cecena-Durán, C., Moreno-Cruz, C.F. (2021). Characterization of grape marc hydrolysates and their antifungal effect against phytopathogenic fungi of agricultural importance. Chilean Journal of Agricultural Research, 81, 151–160. https://doi.org/10.4067/S0718-58392021000200151.
Atwa, M. A. (2015). Quantitative determination of cochineal extract, carmine, carminic acid, and 4-aminocarminic acid in some food-stuffs. Journal of Agricultural Chemistry and Biotechnology, 6(6), 177–190. https://doi.org/10.21608/jacb.2015.48399
Borges, M. E., Tejera, R. L., Díaz, L., Esparza, P., & Ibáñez, E. (2012). Natural dyes extraction from cochineal (Dactylopius coccus Costa): New extraction methods. Food Chemistry, 132(4), 1855–1860. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.12.018
Ferreyra-Suarez, D., Paredes-Vargas, L., Jafari, S. M., García-Depraect, O., & Castro-Muñoz, R. (2024). Extraction pathways and purification strategies towards carminic acid as natural-based food colorant: A comprehensive review. Advances in Colloid and Interface Science, 323, 103052. https://doi.org/10.1016/j.cis.2023.103052
MacGillivray, A. D. (1921). The Coccidae: Tables for the identification of the subfamilies and some of the more important genera and species, together with discussions of their anatomy and life history. Scarab Company. https://archive.org/details/coccidae-tables-for-the-identification-of-the-subfamilies
Reyes-Pérez, R., Pérez-Hernández, J., Rosas-Morales, M., Plascencia-Espinosa, M. Á., Lazo-Zamalloa, O., López-Gayou, V., López, P. A., Ríos-Cortés, G., & Ríos-Cortés, A. M. (2024). Quantification of cochineal pigments by UV spectrophotometry. Processes, 12(7), 1253. https://doi.org/10.3390/pr12071253
Salazar-Llangarí, K. G., Erazo-Lara, A. E., Oñate-Bastidas, B. A., Condo-Plazas, L. A., & Cañar-Rivera, J. L. (2023). Extracción de ácido carmínico como colorante natural a partir de la cochinilla (Dactylopius coccus Costa). Polo del Conocimiento, 8(3), 583–605. https://doi.org/10.23857/pc.v8i3
Daayf F., Schmitt A. and Bélanger R.R. 1995. The effects of plant extracts of Reynoutria sachalinensis on powdery mildew development and leaf physiology of long English cucumber. Plant Dis. 79: 577–580.
Doltsinis, S.K., Markellou, E., Kasselaki, A.M., Fanouraki, M.N., Koumaki, C.M., Schmitt, A., Tsakalidis, A.L. and Malathrakis, N.E. 2006. Efficacy of Milsana®, a Formulated Plant Extract from Reynoutria sachalinensis, against Powdery Mildew of Tomato (Leveillula taurica). Biocontrol 51, 375–392. https://doi.org/10.1007/s10526-005-5247-1.
Elad, Y., Messika, Y., Brand, M., David, D. and Sztejnberg, A. 2007. Effect of microclimate on Leveillula taurica powdery mildew of sweet pepper. Phytopathology. 97:813-824.
Glawe, D. A. 2008. The powdery mildews: A review of the world’s most familiar (yet poorly known) plant pathogens. Ann. Rev. Phytopathol. 46: 27-51.
SAS. 2009. Statistical Analysis System Institute, North Carolina USA v.9.2.
SIAP. 2025. Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. En:  https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/. Accesada el 20 de septiembre de 2025.
Townsend, G. R. and Heuberger, J. W.1943. Methods for estimating losses caused by diseases in fungicide experiments. The Plant Disease Reporter, 27: 340-343.
Arias, L. A., Berli, F., Fontana, A., Bottini, R., & Piccoli, P. (2022). Climate Change Effects on Grapevine Physiology and Biochemistry: Benefits and Challenges of High Altitude as an Adaptation Strategy. In Frontiers in Plant Science (Vol. 13). Frontiers Media S.A. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.835425
Bartkovský, M., Semjon, B., Regecová, I., Baričičová, V., Očenáš, P., Šuľáková, L., & Marcinčák, S. (2024). The Effect of a Leaf Fertilization Method Using Humic Acids on the Minerality and Chemical Composition of Sauvignon Blanc Wine from the Slovak Wine Region. Fermentation, 10(12). https://doi.org/10.3390/fermentation10120651
du Jardin, P. (2015). Plant biostimulants: Definition, concept, main categories and regulation. In Scientia Horticulturae (Vol. 196, pp. 3–14). Elsevier. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021
Monteiro, E., Gonçalves, B., Cortez, I., & Castro, I. (2022). The Role of Biostimulants as Alleviators of Biotic and Abiotic Stresses in Grapevine: A Review. In Plants (Vol. 11, Issue 3). MDPI. https://doi.org/10.3390/plants11030396
Pessenti, I. L., Ayub, R. A., Filho, J. L. M., Clasen, F. C., Rombaldi, C. V., & Botelho, R. V. (2022). Influence of abscisic acid, Ascophyllum nodosum and Aloe vera on the phenolic composition and color of grape berry and wine of “Cabernet Sauvignon” variety. Ciencia e Tecnica Vitivinicola, 37(1), 1–12. https://doi.org/10.1051/ctv/ctv202237011
Samuels, L. J., Papageorgiou, A. E., Setati, M. E., & Blancquaert, E. H. (2024). Effects of Ecklonia maxima seaweed extract on the fruit, wine—quality and microbiota in Vitis vinifera L. cv. Cabernet Sauvignon. South African Journal of Botany, 172, 647–662. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2024.07.051
Sedamanos, J. A. C., Guerrero, J. N. Q., Guncay, I. G. T., & Carrillo, J. E. C. (2022). Trichoderma spp: Propagación, dosificación y aplicación en el cultivo de maíz (Zea mays L.). Revista Ciencia y Agricultura, 19(3), 32-44.
Cedeño Acuña, L. A. (2023). Respuesta de las varetas de Pitahaya (Hylocereus undatus) a tres bioestimulantes y tres dosis a nivel de vivero (Bachelor’s thesis, Jipijapa-Unesum). Ecuador.
Olivares, E. 2012. Diseños Experimentales. Facultad de Agronomía de la Universidad Autónoma de Nuevo León. Escobedo N. L. Versión 1.0 en disco compacto. 
Pire, R., & Pereira, A. (2003). Propiedades físicas de componentes de sustratos de uso común en la horticultura del estado Lara, Venezuela. Propuesta metodológica. Bioagro, 15(1), 55-64.
García Arauz, A. J., & Castellon Miranda, K. O. (2024). Efecto de enraizadores y sustratos en esquejes para la producción de plantas de café (Coffea arábiga), Matagalpa, Universidad Nacional Autónoma de Nicaragua, Managua. https://repositorio.unan.edu.ni/id/eprint/22064
Lone, A. B., Colombo, R. C., da Silva, C. M., Inagati, A. T., & Roberto, S. R. (2018). Shading levels in the development of dragon fruit (pitaya) nurseries. Agronomy Science and Biotechnology, 4(1), 8-8.
Aveiga-Conde, K. R. (2022). Efecto de la fertilización con bioles en diferentes sustratos sobre el crecimiento de Mangle Nato (Mora oleífera) (Doctoral dissertation, Ecuador-Pucese-Escuela de Gestión Ambiental).
Moreno-Pérez, E., Mora Aguilar, R., Sánchez del Castillo, F., & García-Pérez, V. (2011). Fenología y rendimiento de híbridos de pimiento morrón (Capsicum annuum L.) cultivados en hidroponía. Revista Chapingo. Serie horticultura, 17(SPE2), 5-18.
El‐Saadony, M., Saad, A., Soliman, S., Salem, H., Ahmed, A., Mahmood, M., El-Tahan, A., Ebrahim, A., El-Mageed, T., Negm, S., Selim, S., Babalghith, A., Elrys, A., El-Tarabily, K., & AbuQamar, S. (2022). Plant growth-promoting microorganisms as biocontrol agents of plant diseases: Mechanisms, challenges and future perspectives. Frontiers in Plant Science, 13. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.923880.
Larios-Larios, EJ, Valdovinos Nava, JDJW, Chan Cupul, W., García López, FA, Manzo Sánchez, G., & Buenrostro Nava, MT (2019). Biocontrol de Damping off y promoción del crecimiento vegetativo en plantas de Capsicum chinense (Jacq) con Trichoderma spp. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 10 (3), 471-483.
Santana-Baños, Y., del Busto Concepción, A., González Fuentes, Y., Aguiar González, I., Carrodeguas Díaz, S., Páez Fernández, P. L., & Díaz Lugo, G. (2016). Efecto de Trichoderma harzianum Rifai y FitoMas-E® como bioestimulantes de la germinación y crecimiento de plántulas de tomate. Centro Agrícola, 43(3), 5-12.
SIAP. 2020. Producción anual agrícola. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. SIAP. 2019. Panorama Agroalimentario 2019. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. 214 p
Parra-Cota, F. I., Coronel-Acosta, C. B., Amézquita-Avilés, C. F., Santos-Villalobos, S. D. L., & Escalante-Martínez, D. I. (2018). Diversidad metabólica de microorganismos edáficos asociados al cultivo de maíz en el Valle del Yaqui, Sonora. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 9(2), 431-442.
Pedraza-R. O., Teixeira, K. R., Scavino, A. F., de Salamone, I. G., Baca, B. E., Azcón, R., … & Bonilla, R. (2010). Microorganismos que mejoran el crecimiento de las plantas y la calidad de los suelos. Revisión. Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 11(2), 155-164.
Ahern Agri. (2020, 28 febrero). Mini Bell Peppers – AH1290, AH1440, AH1450- Ahern Seeds [Vídeo]. YouTube. https://www.youtube.com/watch?v=mPjTy1Ypp24
De Agricultura y Desarrollo Rural, S. (s. f.). México, principal exportador mundial de pimientos frescos: Agricultura. gob.mx. https://www.gob.mx/agricultura/prensa/mexico-principal-exportador-mundial-de-pimientos-frescos-agricultura
Producción de pimientos mini, una nueva alternativa de negocio | Intagri S.C. (s. f.). https://www.intagri.com/articulos/hortalizas/produccion-de-pimiento-mini-alternativa-de-negocio
Samaniego Sánchez, R. D. (2006). Efecto de la producción orgánica y convencional de chile dulce (Capsicum annum) bajo invernadero sobre el componente planta-suelo en el cantón de Alfaro Ruiz, Costa Rica (Tesis de maestría, Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza). Repositorio del Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza. https://repositorio.catie.ac.cr/handle/11554/4225
Allen, R. G., Pereira, L. S., Raes, D., & Smith, M. (1998). Crop evapotranspiration: Guidelines for computing crop water requirements (FAO Irrigation and Drainage Paper No. 56). Food and Agriculture Organization of the United Nations.
Comisión Internacional de Límites y Aguas (CILA). (2024, 21 de marzo). Acta 330: Ampliación de las medidas temporales en el Río Colorado [Minuta]. https://www.cila.gob.mx/actas/330.pdf.
IMTA. (2020). El agua en el Valle de Mexicali, Baja California: origen, uso y destino. Instituto Mexicano de Tecnología del Agua. https://www.imta.gob.mx/gobmx/2020/EL_AGUA_VALLE_MEXICALI.pdf.
Maisha, R. M., & Steele, D. D. (2025). Field calibration of a time-domain reflectometry sensor for soil water content measurement. Water, 17(8), 1203. https://doi.org/10.3390/w17081203.
SADER (Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural). (2023, 30 de mayo). Aumenta la superficie sembrada del ciclo Primavera-Verano 2023 en Mexicali. Gobierno de México. https://www.gob.mx/agricultura/bajacalifornia/articulos/aumenta-la-superficie-sembrada-del-ciclo-primavera-verano-2023-en-mexicali
Sifuentes-Ibarra, E., Macías-Cervantes, J., González-Hernández, F., Flores-Gallardo, H., Borbón-Gracia, A., & Preciado-Rangel, P. (2016, septiembre 8–10). Metodología sistematizada con TDR portátiles, para el manejo eficiente del agua en maíz en Sinaloa [Ponencia]. II Congreso Nacional de Riego y Drenaje (COMEII 2016), Chapingo, Estado de México.
Allen, R. G., Pereira, L. S., Raes, D., & Smith, M. (1998). Crop evapotranspiration-Guidelines for computing crop water requirements-FAO Irrigation and drainage paper 56. Fao, Rome, 300(9), D05109.
Ávila, M.J.A., Ávila, S.J.M., Rivas, S.F.J. y Martínez, H.D. (2014).  El cultivo del trigo. Sistema de producción en el noroeste de México. Universidad de Sonora. 
Cruz-Bautista, F., López-Cruz, I.L., Rodríguez, J.C., Ochoa-Meza, A., Ruíz-García, A. and Er-Raki, S. (2024) Irrigation optimization in green asparagus (Asparagus officinalis L.) using the AquaCrop model and evolutionary strategy algorithms. Irrigation and Drainage, 73(1), 136–150. Available from: https://doi.org/10.1002/ird.2853
Fernández-Hernández, M., Cruz-Bautista, F., Rodríguez, J.C., Chatir, L.E. (2024). Rendimiento de trigo cristalino (triticum durum) y productividad del agua de riego en dos fechas de siembra en Sonora. En: Producción agrícola sustentable: estrategias biológicas para el fortalecimiento de la seguridad alimentaria. Agua y suelo. Tomo II. Astra Editorial. México.
International Plant Protection Convention. (2023). Don’t let these fields of gold disappear: Wheat (Triticum sp.). Food and Agriculture Organization of the United Nations. https://www.ippc.int/en/resources/top-crops-why-protecting-them-from-plant-pests-matter/wheat-triticum-sp
Lobell, D. B., Schlenker, W., & Costa-Roberts, J. (2011). Climate trends and global crop production since 1980. Science, 333(6042), 616–620. https://doi.org/10.1126/science.1204531
Pask, ADJ., Pietragalla, J., Mullan, DM., Chávez-Dulanto PN. Y Reynolds, MP (Eds). (2013). Fitomejoramiento Fisiológico II: Una guía para la caracterización Fenotípica del Trigo. México, 
Pedrozo-Acuña, A. (2020). Hacia una agricultura eficiente y sustentable. Perspectivas IMTA Núm. 21. DOI: doi.org/10.24850/b-imta-perspectivas-2020-21
Pistoni, L. (2020). Cultivo de Trigo. Recuperado de: https://eac.unr.edu.ar/wp-content/uploads/2020/03/Cultivo-de-Trigo-2020.pdf. Consultado el 10/04/2024.
Saint Pierre C, Crossa JL, Bonnett D, Yamaguchi-Shinozaki K, Reynolds MP. (2012). Phenotyping transgenic wheat for drought resistance. J Exp Bot. 63(5):1799-808. doi: 10.1093/jxb/err385. 
Salinas, A., Giubergia, J.P., Severina, I y Aimar F. (2015). Consumo y disponibilidad de agua en cultivo de riego. Informe técnico. Grupo de Riego del INTA Manfredi. Riegos y Drenajes Argentina. 
Valenzuela-Antelo, JL., Bénitez-Riquelme, I., Villaseñor-Mir, HE., Huerta-Espino,J., Lobato-Ortiz, R., Bueno-Aguilar, G. y Vargas-Hernández, M. (2018). Comparación del rendimiento de trigos harineros y cristalinos a través de diferentes ambientes de riego. Revista fitotecnia mexicana, 41(2), 159-166. https://doi.org/10.35196/rfm.2018.2.159-166.
Zwart, S.J., and Bastiaanssen, W.G.M. (2004). Review of measured crop water productivity values for irrigated wheat, rice, cotton and maize. Agricultural Water Management. 69(2),115-133. ISSN 0378-3774.https://doi.org/10.1016/j.agwat.2004.04.007. 
Castro, M., López, T., & Ramírez, A. 2018. Condiciones ambientales para la propagación de cactus mediante esquejes. Journal of Arid Land Studies, 28(4), 240-246.
Méndez, R., López, A., & Hernández, L. 2016. Efecto de la sombra sobre el enraizamiento de esquejes de cactáceas. Acta Botánica Mexicana, 115, 33-40.
Olivares, E. 2012. Diseños Experimentales. Facultad de Agronomía de la Universidad Autónoma de Nuevo León. Escobedo N. L. Versión 1.0 en disco compacto. 
Osuna-Enciso, Tomás, Valdez-Torres, José B., Sañudo-Barajas, Josefa A., Muy-Rangel, Ma. Dolores, Hernández-Verdugo, Sergio, Villarreal-Romero, Manuel, & Osuna-Rodríguez, José M. 2016. Fenología reproductiva, rendimiento y calidad del fruto de pitahaya (Hylocereus undatus (How.) Britton and Rose) en el valle de Culiacán, Sinaloa, México. Agrociencia, 50(1), 61-78.
Verona-Ruiz, A., Urcia-Cerna, J., & Paucar-Menacho, L. 2020. Pitahaya (Hylocereus spp.): Culture, physicochemical characteristics, nutritional composition, and bioactive compounds. Scientia Agropecuaria, 11(3), 439-453.  
Montesinos Cruz J. A., Rodríguez-Larramendi L., Ortiz-Pérez R., Fonseca-Flores M. A., Ruíz Herrera G. y Guevara-Hernández F. (2015). Pitahaya (Hylocereus spp.) un recurso fitogenético con historia y futuro para el trópico seco mexicano. Revista Scielo. Vol. 36 http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0258-59362015000500007  
Alananbeh, K. M., Araj, S.-E., & Al Taweel, H. M. (2019). First record of Raoiella indica Hirst (Acari: Tenuipalpidae) in Jordan. International Journal of Acarology, 45(4), 233–234. http://www.zoobank.org/urn:lsid:zoobank.org:pub:A44D3E74-A69C-488C-8638-1B7EB1177146
Etienne, J. & Fletchmann, C.H.W. (2004) First record of Raoiella indica (Hirst, 1924) (Acari: Tenuipalpidae) in Guadaloupe and Saint Martin, West Indies. International Journal of Acarology, 32, 331–332. 
García-Morales, R., Rodríguez, D., & López, A. (2022). Influence of microclimatic factors on mite pests in subtropical crops. Crop Protection, 152, 105820.
Global Invasive Species Database. (2025). Raoiella indica (coconut mite, coconut red mite, frond crimson mite, leaflet false spider mite, red date mite, red palm mite, scarlet mite). IUCN. https://www.iucngisd.org/gisd/search.php
Hernández, J., Pérez, F., & Castillo, M. (2021). Phenological synchronization of date palm and pest outbreaks: Implications for management. Journal of Applied Entomology, 145(9), 857–867. https://doi.org/10.1111/jen.12889
Peña, J. E., Childers, C. C., & Duncan, R. E. (2020). Biology and management of mites in tropical crops. Experimental and Applied Acarology, 82, 1–20. https://doi.org/10.1007/s10493-020-00506-4
Ramos-Lima, M.& Ramírez -Ortega, F. (2024). Reporte de Raoiella indica Hirst (Acari: Tenuipalpidae) en palma dátil en Baja California México. Mexican journal of technology and engineering 3(2):25-31 DOI:10.61767/mjte.003.2.2531 
Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA). (2020). Ácaro rojo de las palmas. https://www.gob.mx/senasica/documentos/acaro-rojo-de-las-palmas
Zona Norte Noticias (ZNN). (2025). Aumentó la producción de dátil en Valle de Mexicali. Zona Norte Noticias. https://zonanorte.mx/main/mozaico/nid/2656
Adams, P. (2004). Aspectos de la nutrición mineral en cultivos sin suelo en relación al suelo. En G. M. Urrestarazu (Ed.), Tratado de Cultivo sin Suelo (pp. 81-111). Mundi-Prensa.
Ortiz, J., Sánchez, F., Mendoza, M., & Torres, A. (2009). Características deseables de plantas de pepino crecidas en invernadero e hidroponía en altas densidades de población. Revista fitotecnia mexicana, 32(4), 289-294. Recuperado en 19 de septiembre de 2025, de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802009000400007&lng=es&tlng=es.
Poveda, L., López, D., & Garay, G. (2020). Evaluación del crecimiento, rendimiento y calidad de tres híbridos de pepino (Cucumis sativus L.) en un sistema de producción hidropónico. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 14(2), 209-220.
Rincón-, L., Salgado, L., Hernández, J & Ramírez, M. (2019). Extracción de nutrientes, crecimiento y producción del cultivo de pepino bajo sistema de cultivo protegido hidropónico. Tecnología en Marcha, 32(1), 162-171.
Sánchez, F., González, L., Moreno, E., Pineda, J & Reyes, C. (2014). Dinámica nutrimental y rendimiento de pepino cultivado en hidroponía con y sin recirculación de la solución nutritiva. Revista fitotecnia mexicana, 37(3), 261-269. Recuperado en 19 de septiembre de 2025, de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802014000300013&lng=es&tlng=es.
Steiner, A. 1961. A universal method for preparing nutrient solutions of a certain desired composition. Plant and Soil, 15(2), 134–154. https://doi.org/10.1007/BF01347224

 
Carrillo-Fasio, J. A., García-Estrada, R. S., Allende-Molar, R., Márquez-Zequera, I., & Cruz-Ortega, J. E. 2000. Identification and distribution of root-knot nematode species (Meloidogyne spp.) in vegetables in Sinaloa, Mexico. Mexican Journal of Plant Pathology, 18(2), 115-119. DOI: 10.1007/s40858-020-00400-6       
Carrillo-Fasio, J. A., Angúlo-Castro, A., Martínez-Gallardo, J. Á., Ayala-Tafoya, F., Yáñez-Juárez, M. G., & Retes-Manjarrez, J. E. 2021. Distribution and incidence of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.) on pepper in Sinaloa, Mexico. Tropical Plant Pathology, 46, 195-200. https://doi.org/10.1007/s40858-020-00400-6         
Eisenback, J.D., Hirschmann, H., Sasser, J.N. & Triantaphyllou, A.C. 1983. Guide to the identification of the four most common species of root-knot nematode (Meloidogyne species), with a pictorial key. Department of Plant Pathology, North Carolina State University, Raleigh, North Carolina, USA.        
Gifford, M. L., Dean, A., & Beveridge, C. A. 2009. Differing requirements for flavonoids during the formation of lateral roots, nodules and root knot nematode galls in Medicago truncatula. New Phytologist, 183(4), 1069–1082. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2009.02850.x         
Hernández-Huerta, J., Gámez-Vázquez, A. J., Rivas-Valencia, P., & Cervantes-Díaz, L. 2024. First report of Meloidogyne incognita infecting Capsicum pubescens in Sinaloa, Mexico. Plant Disease, 108(2), 761. https://doi.org/10.1094/PDIS-06-23-1230-PDN    
Hajihassani, A., Davis, R., y Timper, P. 2019. Evaluation of selected nonfumigant nematicides on increasing inoculation densities of Meloidogyne incognita on Cucumber. Plant Dis. (12) 3161-3165. doi: 10.1094/PDIS-04-19-0836-RE.      
López-Nicora, H.D., Soilán-Duarte, L.C., Caballero-Mairesse, G.G., Grabowski-Ocampos, C.J. & Enciso-Maldonado, G.A. 2021. Agricultural Nematology Manual. Fundamentals and Procedures. 1st Edition. Publisher: Universidad San Carlos. Editor: Atlas. ISBN: 978-99925-273-6-8. DOI:10.53997/DFXA5914    
Martinez-Gallardo J.A., Díaz-Valdés T., Allende-Molar R., Retes-Manjarrez J.E. and Carrillo-Fasio J.A. 2019. Identification and distribution of Meloidogyne spp. in tomato in Sinaloa, Mexico. Mexican Journal of Agricultural Sciences. Vol. 10 No. 2. https://doi.org/10.29312/remexca.v10i2.392           
Osuna-Rodríguez, P., Rivas-Valencia, P., Hernández-Huerta, J., & Cid del Prado-Vera, I. 2025. First report of Meloidogyne incognita infecting Capsicum pubescens in Sinaloa, Mexico. Plant Disease, 108(2), 761. https://doi.org/10.1094/PDIS-06-23-1230-PDN      
Rivas-Valencia, P., Torres-Bautista, R., Guzmán-Plazola, R. A., & Cid del Prado-Vera, I. 2019. Identificación y distribución de Meloidogyne spp. en tomate de Sinaloa, México. Revista Mexicana de Fitopatología, 37(2), 231–246. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.1903-5    
Rosas-Hernández, L., Ramírez-Suárez, A., Alcasio-Rangel, S. & Morales-Galván, O. 2014. Diagnosis and phylogenetic analysis of the burrowing nematode Radopholus similis on Banana (Musa paradisiaca L.). Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria, Dirección General de Sanidad Vegetal. SENASICA-SAGARPA.      
Villar Luna, R., Guzmán Plazola, R. A., Cid del Prado Vera, I., & Torres Bautista, R. 2016. First report of Meloidogyne enterolobii infecting jalapeño pepper in Sinaloa, Mexico. Journal of Nematology, 48(2), 121–123. https://doi.org/10.21307/jofnem-2016-037 
Echanove F. 2010. Agribusiness and Contract Farming: The Case of Small-Scale Cucurbur Producers in Mexico. Iberoamericana-Nordic Journal of Latin American and Caribbean Studies, 39,1-2,75. 10.16993/ibero.70
Diédhiou I. (2017). Respuesta del cultivo de pepino (Cucumis sativus L.) a la aplicación de abonos orgánicos con diferentes tiempos de fermentación. Tesis de Maestría, Universidad Autónoma de San Luis Potosí.
Murillo‑Amador B. (2009). Inteligencia de mercado: pepino (Primera etapa del proyecto SAGARPA‑CONACYT 2009‑II‑126183). Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (CIBNOR). 
Jlani M., Bakar A., Waseem K. and Kiran M. 2009.  Effect of different levels of NPK on the growth and yield of cucumber (Cucumis sativus) under the plastic tunnel. J. Agric. Soc. Sci, 5, 99–101. https://doi.org/10.55544/jrasb.3.5.7
Gajali G., Subaedah S. and  Saida, S. (2025). Response of growth and yield of cucumber (Cucumis sativus L.) to NPK fertilizer application and mulch treatment. Agrogenesis Jourmal of Sustainable Agriculture and Innovation, 1, 1, 86-99. 10.33096/agrogenesis.v1i1.703
Ávila, C. E., Camarillo, P. M., Aguilera, M. N., Ochoa, E. X., García, B. E. y Cota, B. C. 2024. Evaluación de líneas elite de cártamo (Carthamus tinctorius L.) de tipos oleicas, en el Valle de Mexicali, B. C. Memoria XXVII Congreso Internacional en Ciencias Agrícolas. Mexicali. B. C. p. 791.
Kahraman, Ş. 2025. Determination of Yield and Quality in Some Safflower (Carthamus tinctorius L.) Cultivars Under Diyarbakır Ecological Conditions. Anadolu, J. of AARI 35(1): 1-7.  10.18615/anadolu.1514564. 
La Bella, S., Tuttolomondo, T., Lazzeri, L., Matteo, R., Leto, C. and Licata, M. 2019. An Agronomic Evaluation of New Saffower (Carthamus tinctorius L.) Germplasm for Seed and Oil Yields under Mediterranean Climate Conditions Agronomy 9(468): 1-16. doi:10.3390/agronomy9080468. 
Mousavi, O. S. M., Mozafari, H., Jabbari, H. y Sani, B. 2020. Evaluation of yield of safflower (Carthamus tinctorius L.) genotypes under semi-arid conditions. Plant Genetic Resources: Characterization and Utilization; 1-8. doi:10.1017/S1479262120000301.
Ochoa, E. X M., Aguilera, M. N. A., García, B. E. H., Ávila, C. E., Cota, B. C. I. y Navejas, J. J. 2024. Validación de líneas elite y variedades de cártamo (Carthamus tinctorius L.) en el Valle del Yaqui. Memoria XXVII Congreso Internacional en Ciencias Agrícolas, Mexicali. B. C. p. 775.
SAS Institute Inc. 2014. SAS-Statistical Analysis Software for Windows Version 9.4M2. Cary, NC: SAS Inst. Inc.
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera). 2025. Panorama Agroalimentario – La ruta de la Transformación Agroalimentaria 2018-2024. Agricultura. Consultado el 15 de Agosto de 2025.
Blasco, B., Rios, J. J., Cervilla, L. M., Sánchez-Rodríguez, E., Ruiz, J. M., & Romero, L. (2015). Iodine biofortification and antioxidant capacity of lettuce: potential benefits for cultivation and human health. Annals of Applied Biology, 156(1), 145-151.
Combs, G. F. (2001). Selenium in global food systems. British Journal of Nutrition, 85(5), 517-547.
Germ, M., Stibilj, V., & Osvald, J. (2007). Selenium treatment affects the photosynthesis and carbohydrate metabolism in lettuce (Lactuca sativa L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55(3), 795-801.
Golob, A., Novak, T., Maršić, N. K., & Germ, M. (2021). Biofortification with iodine and selenium affects the production and storage of chlorophyll in lettuce plants. Journal of the Science of Food and Agriculture, 101(3), 1008–1017.
Martínez-Alcántara, B., Iglesias, D. J., & Primo-Millo, E. (2016). El cultivo sin suelo en horticultura: fundamentos y aplicaciones. Horticultura Internacional, 27(1), 10-19.
Schiavon, M., & Pilon-Smits, E. A. H. (2017). The fascinating facets of plant selenium accumulation-biochemistry, physiology, evolution and ecology. New Phytologist, 213(4), 1582-1596.
Smoleń, S., Kowalska, I., & Sady, W. (2016). Assessment of biofortification with iodine and selenium of lettuce cultivated in the NFT hydroponic system. Scientia Horticulturae, 213, 208-218.
Statistical Analysis System (SAS Institute Inc.). (2002). User´s guide. Version 9.4 Cary, N. C. USA.
White, P. J., & Broadley, M. R. (2009). Biofortification of crops with seven mineral elements often lacking in human diets-iron, zinc, copper, calcium, magnesium, selenium and iodine. New Phytologist, 182(1), 49-84. 
Aguilar, B. G., Vázquez, D. E. G., Castro, R. R., Cruz, C. E. y Jarquín, G. R. 2019.  Germinación de cultivares de frijol con características físicas contrastantes bajo condiciones de estrés osmótico. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 10(2): 239‒251.
Basavaraja, T., Manjunatha, L., Chandora, R., Gurumurthy, S. and Singh, N. P. 2020. Assessment of Genetic Variability, Diversity and Trait Correlation Analysis in Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Genotypes. Legume Research – An International Journal: 1‒9. DOI: 10.18805/LR-4208.
Devi, M., Dhanalakshmi, S., Govindarajan, G. E. T., Tanisha, B. A., Sonalika, T., Ruth, J. E., Avinash, T., Sri, C. J., Logeswaran, K. and Ramasamy, M. N. 2020. A Review on Phaseolus vulgaris Linn., …… Pharmacognosy Journal 12(5): 1160‒1164.
Jan, S., Rather, I. A., Sofi, P. A., Wani, M. A., Sheikh, F. A., Bhat, M. A. and Mir, R. R. 2021. Characterization of common bean (Phaseolus vulgaris L.) germplasm for morphological and seed nutrient traits from Western Himalayas. Legume Science 3(2): 1‒16.
Morales-Morales, A. E., Andueza-Noh, R. H., Márquez-Quiroz, C., Benavides-Mendoza, A., Tun-Suarez, J. M., González-Moreno, A. y Alvarado-López, C. J. 2019. Caracterización morfológica de semillas de frijol caupí (Vigna unguiculata L. Walp) de la Península de Yucatán. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios 6(18): 463‒475.
Oreamuno-Fonseca, P., Monge-Pérez, J. E. y Loría-Coto, M. 2023. Caracterización morfológica de las semillas de frijoles nativos de Guanacaste, Costa Rica. UNED Research Journal 15(2):  e4690.
 
Sauceda-Acosta, C. P., Rodríguez-Cota, F. G., Cota-Sandoval, M. A., Flores-Sánchez, J. L. y Sauceda-Acosta, R. H. 2023. Calidad física y rendimiento del grano de frijol azufrado en el norte de Sinaloa. Biotecnia 25(3): 79‒84. DOI: 10.18633/biotecnia.v25i3.1964.
SAS Institute Inc. 2014. SAS-Statistical Analysis Software for Windows Version 9.4M2. Cary, NC: SAS Inst.
SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera). 2025. Panorama Agroalimentario – La ruta de la Transformación Agroalimentaria 2018-2024. Agricultura. Consultado el 17 de julio de 2025.
Bansal, S., Rana, D. S., & Chaudhary, J. (2021). Response of onion to nitrogen sources under drip irrigation: productivity, nitrogen use efficiency and quality. European Journal of Horticultural Science, 86(4), 270-278. https://doi.org/10.1007/s10341-021-00573-7
Brown, F. J., Owen Jr, J. S., & Niemiera, A. X. (2025). Transformations of Nitrate, Ammonium, and Urea When Applied to Pine Bark-based Substrate. HortScience, 60(7), 1075–1083. https://doi.org/10.21273/HORTSCI18428-24
Dilruba, S., Alam, M. M., Rahman, M. A., & Hasan, M. F. (2006). Influence of nitrogen and potassium on yield contributing bulb traits of onion. International Journal of Agricultural Research, 1(1), 85–90. https://doi.org/10.3923/ijar.2006.85.90
Fandiño, L., Rincón, L., & Rodríguez, J. (2013). Relación entre materia seca y rendimiento en cebolla de bulbo. Agronomía Colombiana, 31(1), 25–34.
FAO – Food and Agriculture Organization of the United Nations. (2024). The State of the World’s Land and Water Resources for Food and Agriculture – Systems at breaking point. FAO. https://doi.org/10.4060/cb9910en
Gómez, F., Méndez, C., & Rojas, J. (2018). Efecto de la fertilización nitrogenada sobre el crecimiento y rendimiento de cebolla (Allium cepa L.). Revista Científica Agroecosistemas, 6(2), 121–130.
Habtamu, T., Alemayehu, M., & Tolesa, A. (2021). Effect of Nitrogen Fertilizer on Growth and Yield of Onion. African Journal of Plant Science, 15(4), 93–101.
Marschner, P. (2012). Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (3ª ed.). Academic Press
Mata, V. H., Patishtán, P. J., Vázquez, G. E., & Ramírez, M. M. (2011). Fertirrigación del cultivo de cebolla con riego por goteo en el sur de Tamaulipas (Libro Técnico No. 5, 185 p.). INIFAP.
Motasim, A.M., Samsuri, A.W., Nabayi, A. y otros. Aplicación de urea en el suelo: procesos, pérdidas y alternativas, una revisión. Discov Agric 2, 42 (2024). https://doi.org/10.1007/s44279-024-00060-z
Otieno, H. M., Wakhungu, J., & Musyimi, D. (2021). Influence of nitrogen sources and rates on bulb yield and quality of onion (Allium cepa L.). African Journal of Agricultural Research, 16(2), 245–253. https://doi.org/10.5897/AJAR2020.15133 
Ren, B., Guo, Y., Liu, P., Zhao, B., & Zhang, J. (2021). Effects of Urea-Ammonium Nitrate Solution on Yield, N₂O Emission, and Nitrogen Efficiency of Summer Maize Under Integration of Water and Fertilizer. Frontiers in Plant Science, 12, 1–12. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.676156
Schenk, P.M., Carvalhais, L.C., & Kazan, K. (2020). Unraveling plant–microbe interactions: can multi-omics help? Trends in Biotechnology, 38(9), 1015–1027.
Sharma, P., Shukla, M. K., Sammis, T. W., & Adhikari, P. (2012). Nitrate‐nitrogen leaching from onion bed under furrow and drip irrigation systems. Applied and Environmental Soil Science, 2012(1), 650206. https://doi.org/10.1155/2012/650206 
Silva, C. A., Andrade, R. P., & Almeida, G. F. (2019). Efeito da adubação nitrogenada sobre a matéria seca de bulbos de cebola. Revista Brasileira de Agricultura Irrigada, 13(1), 102–110.
Von Wirén, N., Gazzarrini, S. & Frommer, W.B. Regulation of mineral nitrogen uptake in plants. Plant and Soil 196, 191–199 (1997). https://doi.org/10.1023/A:1004241722172
Zhang, X.-Y., Zhang, C., Zou, H.-T., Kou, L., Yang, Y., Wen, X., et al. (2017). Contrasting effects of ammonium and nitrate additions on the biomass of soil microbial communities and enzyme activities in subtropical China. Biogeosciences 14 (20), 4815–4827. doi: 10.5194/bg-14-4815-2017
Anderson, J., Boonyaves, K., Okamoto, H., Karaket, N., Chuekong, W., Garvie, M., Chabang, N., Osorio, D., & Supaibulwatana, K. (2025). Image-based leaf SPAD value and chlorophyll measurement using a mobile phone: enabling accessible and sustainable crop management. bioRxiv, 2025-07. https://doi.org/10.1101/2025.07.08.663527
Dunn, B., Singh, H., Payton, M., & Kincheloe, S. (2018). Effects of nitrogen, phosphorus, and potassium on SPAD-502 and atLEAF sensor readings of Salvia. Journal of Plant Nutrition, 41: 1674-1683. https://doi.org/10.1080/01904167.2018.1458874
Jacquemoud, S., & Ustin, S. (2019). Leaf optical properties. Cambridge University Press.
Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. In: Methods in enzymology (Vol. 148, pp. 350-382). Academic Press.
Mohan, P., & Gupta, S. (2019). Intelligent image analysis for retrieval of leaf chlorophyll content of rice from digital images of smartphone under natural light. Photosynthetica, 57: 388-398. https://doi.org/10.32615/ps.2019.046
Putra, B. T. W., & Soni, P. (2020). Improving nitrogen assessment with an RGB camera across uncertain natural light from above-canopy measurements. Precision Agriculture, 21: 147-159. https://doi.org/10.1007/s11119-019-09656-8
Cerna-Chávez, E., Malacara-Herrera, I. del R., Ochoa-Fuentes, Y. M., & Hernández-Juárez, A. (2023). Evaluación in vitro de extractos vegetales adicionados con nanopartículas para el control de Fusarium oxysporum. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios, 10(2), e3224. https://doi.org/10.19136/era.a10n2.3424
   Fraga-Corral, M., Otero, P., Echave, J., Pereira, A. G., Garcia-Oliveira, P., Perez-Vazquez, A., Donn, P., Cassani, L., Cao, H., Simal-Gandara, J., & Prieto, M. A. (2023). Algal extracts as preventive mechanism for mycotoxins development. Biology and Life Sciences Forum, 24(1), 5. https://doi.org/10.3390/iect2023-14814
Leyva-Mir, S., Vega-Portillo, H., Villaseñor-Mir, H., Tlapal, B., Vargas-Hernández, M., Camacho-Tapia, M., & Tovar-Pedraza, J. (2017). Caracterización de especies de Fusarium causantes de pudrición de raíz del trigo en el Bajío, México. Chilean Journal of Agricultural & Animal Sciences, 33, 142–151. https://doi.org/10.4067/s0719-38902017005000404
   Pariona, N., Hermida Montero, L. A., Martínez, A. I., & Sánchez Rangel, D. (2018). Síntesis de nanopartículas de cobre para el control de hongos fitopatógenos. Revista Eciperu, 31(2), 109–116. https://doi.org/10.33017/reveciperu2018.0017
               Righini, H., Baraldi, E., García Fernández, Y., Martel Quintana, A., & Roberti, R. (2019). Different antifungal activity of Anabaena sp., Ecklonia sp., and Jania sp. against Botrytis cinerea. Marine Drugs, 17(5), 299. https://doi.org/10.3390/md17050299
   Schmid, B., Coelho, L., Schulze, P. S. C., Pereira, H., Santos, T., Maia, I. B., Reis, M., & Varela, J. (2022). Antifungal properties of aqueous microalgal extracts. Bioresource Technology Reports, 18, 101096. https://doi.org/10.1016/j.biteb.2022.101096
Pourakbar L, Moghaddam SS, Enshasy HAE, Sayyed RZ.(2021) Antifungal Activity of the Extract of a Macroalgae, Gracilariopsis persica, against Four Plant Pathogenic Fungi. Plants (Basel). 26;10(9):1781. doi: 10.3390/plants10091781. PMID: 34579314; PMCID: PMC8467150. 
Burritt M., Valle-de-Souza S. and Peterson H. C. 2025. Sustainability, 17, 1, 2957, https://doi.org/10.3390/su17072957
Despoina A. D. and Xydis G. 2020. How energy innovation in indoor vertical farming can improve food security, sustainability, and food safety?. Advances in Food Security and Sustainability, 25, 5-1, 10.1016/bs.af2s.2020.08.002
Fussy A. and Papenbrock J. 2022. An Overview of Soil and Soilless Cultivation Techniques—Chances, Challenges and the Neglected Question of Sustainability. Plants, 11,9, 1153. https://doi.org/10.3390/plants11091153
Kodmany-Al K. 2018. The Vertical Farm: A Review of Developments and Implications for the Vertical City. Buildings, 8, 24, 10.3390/buildings802002410.1007/978-981-15-7470-2_8
Pulido K. N. Y Rincon A. T. 2024. Evaluación de algunas variables de rendimiento agronómico de la espinaca (spinacia oleracea L.) bajo fertilización orgánica y convencional . Trabajo de grado presentado para obtener los titulos profesionales .Universidad de ciencias aplicadas y ambientales https://repository.udca.edu.co/server/api/core/bitstreams/4ebbd352-4e8e-4e6a-846c-f2147afeaa80/content
Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. (2025). Estudio estadístico de producción agrícola. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. x/agricultura/dgsiap/acciones-y-programas/produccion-agricola-404122
SIAP. https://www.gob.mSegRamaiyan B., Kour J., Ahmad N. G., Anand N. and Shafiq A. M.  2020. Spinach (Spinacia oleracea L.). Antioxidants in Vegetables and Nuts – Properties and Health Benefits. 1,159-177.
Abou J. Y., Ezzeddine N., Fardoun A., Kharroubi S., Sobh H.,, Atamian H. S., Skinner M. and Parker B. (2024). Biological Control of Three Major Cucumber and Pepper Pests: Whiteflies, Thrips, and Spider Mites, in High Plastic Tunnels Using Two Local Phytoseiid Mites. Plants, 13, 6, 889. https://doi.org/10.3390/plants13060889
Allen R. G., Pereira L. S., Raes D. and Smith M. (2018). Crop evapotranspiration: Guidelines for computing crop water requirements (FAO Irrigation and drainage paper 56). Italy, FAO
Banik B., Korav S., Guin A. and Unjia D. 2024. Impact of Drip Irrigation on Crop Growth, Yield, Water Productivity, and Weed Dynamics: A Review. International Journal of Environment and Climate Change. 14 (4): 739-749,
Jlani M., Bakar A., Waseem K. and Kiran M. (2009).  Effect of different levels of N-P-K on the growth and yield of cucumber (Cucumis sativus) under the plastic tunnel. J. Agric. Soc. Sci, 5, 99–101. Recuperado de https://www.researchgate.net/publication/242418561_Effect_of_Different_Levels_of_NPK_on_the_Growth_and_Yield_of_Cucumber_Cucumis_sativus_Under_the_Plastic_Tunnel
Organización de las Naciones Unidas para la alimentación y la agricultura. (2020). El estado mundial de la agricultura y la alimentación 2020. Italia, FAO.
Pascual B., Maroto J. V., López-Galarza S., San-Bautista A. y Alagarda J. (2019). Respuesta del pepino (Cucumis sativus L.) a diferentes regímenes de riego deficitario controlado. Horticultura Brasileira, 37, 2, 141-148. https://doi.org/10.1590/s0102-053620190202
Rahil M. H. and Qanadillo A. 2015. Effects of different irrigation regimes on yield and water use efficiency of cucumber crop. Agricultural Water Managment, 148, 10-15. 10.1016/j.agwat.2014.09.005
UNESCO World Water Assessment Programme. 2021. The United Nations world water development report 2021: valuing water. France, UNESCO. 
Yang P., Wu L., Cheng M., Fan J., Li S., Wang H. and Qian L. (2023). Review on Drip Irrigation: Impact on Crop Yield, Quality, and Water Productivity in China. Water, 15,9,1733. https://doi.org/10.3390/w15091733
Lu W., Fan H., Zhang Y., Cai B., Wang X., Xue Z. and Li Q. (2025). Low-concentration NaCl foliar spraying enhances photosynthesis, mineral concentration, and fruit quality of strawberry during greenhouse high-temperature periods. BMC Plant Biology, 25, 487, 1-13. https://doi.org/10.1186/s12870-025-06518-6
Lu WFan H., Zhang Y., Cai B., Wang X., Xue Z. and Li. Q.  (2025). Low-concentration NaCl foliar spraying enhances photosynthesis, mineral concentration, and fruit quality of strawberry during greenhouse high-temperature periods.  BMC Plant Biology, 25, 487 1-13. https://doi.org/10.1186/s12870-025-06518-6
Rashad-Javeed H. M., Wang X., Ali M., Nawaz F., Qamar R., Rehman A. U., Shehzard M., Mubeen M., Shabbir R., Javed T., Brance F., Ahmar S. and Ismail I A. (2021). Potential utilization of diluted seawater for the cultivation of some summer vegetable crops: Physological and nutritonal implications. Agronomy, (2021). Potential Utilization of Diluted Seawater for the Cultivation of Some Summer Vegetable Crops: Physiological and Nutritional Implications. Agronomy, 11 (9), 1-14. https://doi.org/10.3390/agronomy11091826
Shannon M. C. and Grive C. M. 1998. Tolerance of vegetables crops to salinity. Scientia Horticulturae, 78 (1-4), 5-38. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(98)00189-7
Turhan A., Kuscu H., Ozmen N., Turhan A., Kuscu H., Ozmen N., Sitki S. M. and Demir A. O. (2014). Effect of different concentrations of diluted seawater on yield and quality of lettuce.  Sitki S. M., and Demir.A. O. (2014). Effect of different concentrations of diluted seawater on yield and quality of lettuce.  Chilean journal of agricultural research. Chilean J. Agric. Res., 47,1, 1-6. 10.4067/S0718-58392014000100017
Zheng W. W., Chun I. J., Hong S. B. and Zang Y. X. (2013) Vegetative growth, mineral change, and fruit quality of ‘Fuji’ tree as affected by foliar seawater application.  Agricultural Water Management, 126, 97-103. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2013.05.010.
Hu X.  Tanaka A. Tanaka, 2013. Simple extraction methods that prevent the artifactual conversion of chlorophyll to chlorophyllide during pigment isolation from leaf samples.  Plant Methods 9:19. http://www.plantmethods.com/content/9/1/19. 
Arjona, H., Herrera, J. E., Gómez, J. A., & Ospina, J. (2004). Evaluación de la aplicación de urea, melaza y aminoácidos sobre el crecimiento y rendimiento de la cebolla de bulbo (Allium cepa L. Grupo cepa) híbrido yellow granex, en condiciones de la Sabana de Bogotá. Agronomía Colombiana, 22(2), 177-184.
El-hay, I.A., Badr, l.A., Mohamed, H.M. And Amer, A.H. 2022. Efecto de la pulverización foliar de algunos aminoácidos en las necesidades hídricas de las plantas de judía verde (Phaseolus vulgaris L.). Anales de Ciencias Agrícolas, Moshtohor. 60(2), 457-468. 
Romero-Félix, C. S., Sánchez-Inzunza, C. A., Ruelas-Islas, J. R., López-Valenzuela, B. E., Buelna-Tarín, S., Almada-Ruiz, V. G. (2024). Uso de Glomus intraradices para el crecimiento de frijol Azufrado Higuera en etapa vegetativa en riego y sequía. Rev. Cienc. Agron. Apl. Biotecnol., 4: 121-125. 
González, J. A. (2021). Rendimiento y componentes en frijol (Vigna unguiculata l.), e ibe (Phaseolus). Instituto tecnológico de china. Tecnológico nacional de México, 80. 
Luna-Guerrero, M. J., & López-Castañeda, C. (2023). Variabilidad genética en biomasa aérea y sus componentes en alfalfa bajo riego y sequía. Revista mexicana de ciencias pecuarias, 14(1), 39-60.
Morales-Morales, A., Márquez-Quiroz, C. É. S. A. R., & López-Espinosa, S. (2023). Importancia económica y nutricional del fréjol xpelón: Las. Centro, 15, 217-223. 
Peña, C.C., Rodríguez, J.C, Olivera, D., León-Orellana, N., Lugones, Y.  (2017). Efecto de un promotor del crecimiento en el comportamiento productivo del frijol (Phaseolus vulgaris L.). Avances en Investigación Agropecuaria 21: 35-45. 
Calzada, K. P., Hurtado, A. C., Peistrup, V., Mühlmann, I., Miranda, D. R., Coca, L. I. R., & Fernández, J. C. R. (2024). Respuestas fisiológicas y productivas de plantas de remolacha tratadas con una solución de aminoácidos. Temas agrarios, 29(1), 113-125.
Villa-Castorena, M. M., Catalán-Valencia, E. A., Inzunza-Ibarra, M. A., Rodríguez, H. M., & del Rosario, M. (2016). Crecimiento de plantas de frijol como una respuesta a la aplicación foliar de sustancias químicas. Agrofaz, 16(2).
Atzori G. Guidi-Nissim W., Caparrotta S., Masi E., Azzarello E., Pandolfi C., Vignolini P., Gonnelli C. and Mancuso S. (2016). Potential and constraints of different seawater and freshwater blends as growing media for three vegetable crops. Agricultural Water Management, 176, 255-262, https://doi.org/10.1016/j.agwat.2016.06.016
Hector-Ardisana E., Torres-Garcia A., Fosado-Tellez O., Peñarrieta-Bravo S., Solorzano-Bravo J., Jarre-Mnedoza V. y Montoya B. J. (2020). Influencia de bioestimulantes sobre el crecimiento y el rendimiento de cultivos de ciclo corto en Manabí, Ecuador. Cultrop, 41, 4, 1-14. 
Holger Manuel C. V. (2015). “Comportamiento Agronómico Del Cultivo De Acelga (Beta Vulgaris L) Con Diferentes Abonos Orgánicos en la finca experimental la maria. Quevedo-Los Rios-Ecuador. 
Medina-SaavedramT., Arroyo-Figueroa G., García-Viera M. I. y Dzul-Cauich Jorge Gustavo. (2017). Producción de acelgas (Beta vulgaris var. cycla) mediante el uso de microorganismos de montaña y Azospirillum brasilensis. Revista de Ciencias Naturales y Agropecuarias,10, 36-42.
Monsalve J., Escobar R., Acevedo M., Sanchez M. y Coopman R. (2009). Efecto de la concentración de nitrógeno sobre atributos morfológicos, potencial de crecimiento radical y estatus nutricional en plantas de Eucalyptus globulus producidas a raíz cubierta. Bosque (Valdivia), 30,2, 88-94. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-92002009000200004
Olivares-Saenz E. 2012. Programa estadístico. Universidad Autónoma de Nuevo León (UANL) versión 1.0.
Rashed-Javeed H. M., Wang X., Ali M., Nawaz F., Qamar R., Rehman A. U., Shehzad M., Mubeen M., Shabbir R., Javed T., Branca F., Ahmar S. and Ismail I. A. (2021). Potential Utilization of Diluted.
AlFaris, N. A., AlTamimi, J. Z., AlGhamdi, F. A., Albaridi, N. A., Alzaheb, R. A., Aljabryn, D. H., … & AlMousa, L. A. (2021). Total phenolic content in ripe date fruits (Phoenix dactylifera L.): A systematic review and meta-analysis. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(6), 3566-3577.
Ashraf, Z., y Hamidi-Esfahani, Z. (2011). Fecha y procesamiento de fechas: una revisión. Food Reviews International , 27 (2), 101-133. 
Guido, F., Behija, S. E., Manel, I., Nesrine, Z., Ali, F., Mohamed, H., … & Lotfi, A. (2011). Chemical and aroma volatile compositions of date palm (Phoenix dactylifera L.) fruits at three maturation stages. Food Chemistry, 127(4), 1744-1754.
Chandrasekaran, M., & Bahkali, A. H. (2013). Valorization of date palm (Phoenix dactylifera) fruit processing by-products and wastes using bioprocess technology–Review. Saudi journal of biological sciences, 20(2), 105-120.
Al Farsi, M. A., & Lee, C. Y. Nutritional and functional properties of dates: a review Critical Reviews. Food Sci Nutr 2008; 48: 877–887.
Afiq, M. A., Rahman, R. A., Man, Y. C., Al-Kahtani, H. A., & Mansor, T. S. T. (2013). Date seed and date seed oil. International Food Research Journal, 20(5), 2035.
Bouaziz, M. A., AMARA, W. B., Attia, H., Blecker, C., & Besbes, S. (2010). Effect of the addition of defatted date seeds on wheat dough performance and bread quality. Journal of texture studies, 41(4), 511-531.
AOAC (2000) Official Methods of Analysis. 17th Edition, The Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, MD, USA. Methods 925.10, 65.17, 974.24, 992.16.
Van Soest, P. J., Robertson, J. B., and Lewis, B. A. (1991). Methods for Dietary Fiber, Neutral Detergent Fiber, and Nonstarch Polysaccharides in Relation to Animal Nutrition. Journal of Dairy Science, 74(10), 3583–3597. doi:10.3168/jds.s0022-0302(91)78551-2
Al-Mawali, M., Al-Khalili, M., Al-Khusaibi, M., Myint, M. T. Z., Kyaw, H. H., Rahman, M. S., Muhammad, A. I., & Al-Habsi, N. (2025). Physicochemical and Structural Characteristics of Date Seed and Starch Composite Powder as Prepared by Heating at Different Temperatures. Polymers, 17(14), 1993. https://doi.org/10.3390/polym17141993
Al-Farsi, M., Alasalvar, C., Al-Abid, M., Al-Shoaily, K., Al-Amry, M. y Al-Rawahy, F. (2007). Características composicionales y funcionales de dátiles, jarabes y sus subproductos. Química de los alimentos, 104 (3), 943-947. 
Aldabayan, Y. S. (2025). Effect of artificial food additives on lung health—An overview. Medicina, 61(4), 684. https://doi.org/10.3390/medicina61040684
Antoniolli, A., Fontana, A. R., Piccoli, P., & Bottini, R. (2015). Characterization of polyphenols and evaluation of antioxidant capacity in grape pomace of the cv. Malbec. Food chemistry, 178, 172–178. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.01.082
Ayala, J. R., Rojano, B. A., Coronado, M. A., Alzate-Arbeláez, A. F., Sagaste, C. A., Vélez, A. D., & Montes, D. G. (2025). Valorization pathway for grape pruning and pomace waste from the wine industry: Energy and non-energy applications. Molecules, 30, 2332. https://doi.org/10.3390/molecules30112332
García-Lomillo, J., & González-SanJosé, M. L. (2017). Applications of wine pomace in the food industry: Approaches and functions. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 16(1), 3–22. https://doi.org/10.1111/1541-4337.12238
Liu, R., & Mabury, S. A. (2020). Synthetic phenolic antioxidants: A review of environmental occurrence, fate, human exposure, and toxicity. Environmental Science & Technology, 54(19), 11706–11719. https://doi.org/10.1021/acs.est.0c05077
Lopes, J. d. C., Madureira, J., Margaça, F. M. A., & Cabo Verde, S. (2025). Grape pomace: A review of its bioactive phenolic compounds, health benefits, and applications. Molecules, 30, 362. https://doi.org/10.3390/molecules30020362
Spinei, M., & Oroian, M. (2021). The potential of grape pomace varieties as a dietary source of pectic substances. Foods, 10, 867. https://doi.org/10.3390/foods10040867
Untea, A. E., Varzaru, I., Vlaicu, P. A., Turcu, R. P., & Panaite, T. D. (2022). Studies on antioxidant activities of grape pomace using in vitro, ex vivo, and in vivo models. Journal of Food Measurement and Characterization. Advance online publication. https://doi.org/10.1007/s11694-022-01608-7
Wang, C., You, Y., Huang, W., & Zhan, J. (2024). The high-value and sustainable utilization of grape pomace: A review. Food Chemistry: X, 24, 101845. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2024.101845
Xu, X., Liu, A., Hu, S., Ares, I., Martínez-Larrañaga, M.-R., Wang, X., Martínez, M., Anadón, A., & Martínez, M.-Á. (2021). Synthetic phenolic antioxidants: Metabolism, hazards and mechanism of action. Food Chemistry, 353, 129488. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.129488
Barraza-Álvarez, FV (2015). Calidad morfológica y fisiológica de pepinos cultivados en diferentes concentraciones nutrimentales. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 9(1), 60-71.
Lins, G. R., Oliveira, C. E. de, Fernandes, C. N. V., Silva, A. R. A. da, Silva, L. J. V., Oliveira, F. F. C. de, & Lima, R. E. M. (2024). Hydrogel polymer in yellow melon plants cultivated under different irrigation depths. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 28(9), e280282. https://doi.org/10.1590/1807-1929/agriambi.v28n9e280282
Liu, Y., Wang, J., Chen, H., & Cheng, D. (2022). Environmentally friendly hydrogel: A review of classification, preparation and application in agriculture. The Science of the total environment,157303. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2022.157303.
Montaño-Mata, N. J., Gil Marín, J. A., & Palmares, Y. (2018). Rendimiento de pepino (Cucumis sativus L.) en función del tipo de bandeja y la edad de transplante de las plántulas. Anales Científicos, 79(2), 377-385.
Neves, O. S. C., Avrella, E. D., Paim, L. P., Fior, C. S. (2021). Retenção de água em substratos com hidrogel: influência das características do material e nível de adubação. Ciência Florestal, 31, 1751- 1767.  https://doi.org/10.5902/1980509843240
Ortega-Torres, A. E., Flores Tejeida, L. B., Guevara-González, R. G., Rico-García, E., & Soto-Zarazúa, G. M. (2020). Hidrogel acrilato de potasio como sustrato en cultivo de pepino y jitomate. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 11(6), 1447-1455.
Pacholczak, A., Nowakowska, K., & Monder, M. J. (2023). Starch-Based Superabsorbent Enhances the Growth and Physiological Traits of Ornamental Shrubs. Agriculture, 13(10), 1893
Pereira, B. J., Rodrigues, G. A., Santos, A. R., Anjos, G. L., & Costa, F. M. (2019). Watermelon initial growth under different hydrogel concentrations and shading conditions. Revista Caatinga, 32(4), 915–923. https://doi.org/10.1590/1983-21252019v32n407rc
Reyes-García, O., Vaquera-Huerta, H., Rendón-Sanchez, G. y Valdez-Lazalde, J.R. (2021). Estimación del riesgo de ocurrencia de heladas aplicando teoría de valores extremos. Instituto Mexicano de Tecnología del Agua, 12(6):328-362. DOI: 10.24850/j-tyca-2021-06-08
Salama, A. N., Haggag, I. A., & Wanas, M. A. (2025). Growth, productivity and quality of cucumber plants as influenced by drought stress and salicylic acid under protected condition. Egyptian Journal of Soil Science, 65(1), 1–14. https://doi.org/10.21608/ejss.2024.305373.1817
Steiner A. A. 1984. The universal nutrient solution. Proceeding sixth international congress on soilless culture. Wageningen. The netherlands. 633-650 pp.
Yakhin, O. I., Lubyanov, A. A., Yakhin, I. A. and Brown, P. H. (2017). Biostimulants in plant science: a global perspective. Front. Plant Sci. 7:671. doi: 10.3389/fpls. 2016.02049 https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fpls.2016.02049/full
Amador-Rodríguez, K. Y., Martínez-Bustos, F., Pérez-Cabrera, L. E., Posadas-Del-Río, F. A., Chávez-Vela, N. A., Sandoval-Cardoso, M. L., & Guevara-Lara, F. (2015). Effect of huitlacoche (Ustilago maydis DC Corda) paste addition on functional, chemical and textural properties of tortilla chips. Food Science And Technology, 35(3), 452-459. https://doi.org/10.1590/1678-457x.6697
Aydoğdu, M., & Gölükçü, M. (2017). Nutritional value of huitlacoche, maize mushroom caused by Ustilago maydis. Food Science and Technology, 37(4), 531–535. https://doi.org/10.1590/1678-457x.19416
Elkanah, F., Oke, M., & Adebayo, E. (2022). Substrate composition effect on the nutritional quality of Pleurotus ostreatus (MK751847) fruiting body. Heliyon, 8(11), e11841. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e11841
Juárez-Montiel, M., De León, S. R., Chávez-Camarillo, G., Hernández-Rodríguez, C., & Villa-Tanaca, L. (2011). Huitlacoche (corn smut), caused by the phytopathogenic fungus Ustilago maydis, as a functional food. Revista Iberoamericana De Micología, 28(2), 69–73. https://doi.org/10.1016/j.riam.2011.01.001
Lindao-Pérez, J. D., Cedeño, A. J. R., Villamar-Torres, R. O., Santillán, A. D. Z., Mera-Pérez, H. A., & Jazayeri, S. M. (2022). Production and bromatological analysis of the oyster mushroom (Pleurotus ostreatus (Jacq. ex Fr.) P.Kumm.) grown with cocoa, banana, coconut and African palm husk substrates. Acta Agriculturae Slovenica, 118(1). https://doi.org/10.14720/aas.2022.118.1.1875
López-Martínez, L., Aguirre-Delgado, A., Saenz-Hidalgo, H., Buenrostro-Figueroa, J., García, H. S., & Baeza-Jiménez, R. (2022). Bioactive ingredients of huitlacoche (Ustilago maydis), a potential food raw material. Food Chemistry Molecular Sciences, 4, 100076. https://doi.org/10.1016/j.fochms.2022.100076
Melanouri, E., Diamantis, I., Dedousi, M., Dalaka, E., Antonopoulou, P., Papanikolaou, S., Politis, I., Theodorou, G., & Diamantopoulou, P. (2025). Pleurotus ostreatus: Nutritional Enhancement and Antioxidant Activity Improvement Through Cultivation on Spent Mushroom Substrate and Roots of Leafy Vegetables. Fermentation, 11(1), 20. https://doi.org/10.3390/fermentation11010020
Sultana, S., Shamsuzzaman, M., Miah, M. a. S., Kakon, A. J., Mafi, A. H., Sen, A., Siddiqui, M. N., & Bhattacharjya, D. K. (2024). Assessment of proximate composition, mineral element profile and antioxidant properties of the edible oyster mushroom grown in Bangladesh. Discover Food, 4(1). https://doi.org/10.1007/s44187-024-00216-2
Villagrán, Z., Martínez-Reyes, M., Gómez-Rodríguez, H., Ríos-García, U., Montalvo-González, E., Ortiz-Basurto, R. I., Anaya-Esparza, L. M., & Pérez-Moreno, J. (2023). Huitlacoche (Ustilago maydis), an Iconic Mexican Fungal Resource: Biocultural Importance, Nutritional Content, Bioactive Compounds, and Potential Biotechnological Applications. Molecules, 28(11), 4415. https://doi.org/10.3390/molecules28114415
Zhao, Q., Liu, X., Cui, L., & Ma, C. (2023). Extraction and bioactivities of the chemical composition from Pleurotus ostreatus: a review. Journal of Future Foods, 4(2), 111–118. https://doi.org/10.1016/j.jfutfo.2023.06.001
Adhikari, B., Dhungana, S. K., Ali, M. W., Adhikari, A., Kim, I.-D., & Shin, D.-H. (2019). Antioxidant activities, polyphenol, flavonoid, and amino acid contents in peanut shell. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 18(4), 437–442. https://doi.org/10.1016/j.jssas.2018.02.004
Cardona, F., Andrés-Lacueva, C., Tulipani, S., Tinahones, F. J., & Queipo-Ortuño, M. I. (2013). Benefits of polyphenols on gut microbiota and implications in human health. Journal of Nutritional Biochemistry, 24(8), 1415–1422. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2013.05.001 
Çiftçi, S., & Suna, G. (2022). Functional components of peanuts (Arachis hypogaea L.) and health benefits: A review. Future Foods, 5, 100140. https://doi.org/10.1016/j.fufo.2022.100140 
de Matos, A. C., Batista, D., Pinheiro, L. G. S. D., Chiocchetti, G. d. M. e., Berni, P. R. d. A., Macedo, G. A., & Macedo, J. A. (2024). Bio-Guided extraction of a phenolic-rich extract from industrial peanut skin with antioxidant and hypotensive potential. Foods, 13(21), 3410. https://doi.org/10.3390/foods13213410. 
Gerber S and Roberts SB (2024) Peanut hulls, an underutilized nutritious culinary ingredient: valorizing food waste for global food, health, and farm economies – a narrative review. Front Nutr. 11:1253315. https://doi.org/10.3389/fnut.2024.1453315
Li, M. & Ma, S. (2024). A review of healthy role of dietary fiber in modulating chronic diseases. Food Research International, 191, 114682. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2024.114682 
Mojica, J., Pérez, W. H., & Sánchez, E. M. (2025). Residuos vegetales generados en plazas de mercado: alternativas para su valorización en la obtención de metabolitos de interés industrial. Entre Ciencia e Ingeniería, 19(37), 09-19. https://doi.org/10.31908/19098367.2884 
Ordoñez-Gómez, E. S., Reátegui-Díaz, D., & Villanueva-Tiburcio, J. E. (2018). Polifenoles totales y capacidad antioxidante en cáscara y hojas de doce cítricos. Scientia Agropecuaria, 9(1), 113–121. http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2018.01.13. 
Rizvi, N. B., Fatima, A., Busquets, R., Khan, M. R., Ashraf, S., Khan, M. S., & Oz, F. (2023). Effect of the media in the Folin–Ciocalteu assay for the analysis of the total phenolic content of olive products. Food Analytical Methods, 16, 1627–1634. https://doi.org/10.1007/s12161-023-02527-z 
Untea, A. E., Varzaru, I., Vlaicu, P. A., Turcu, R. P., & Panaite, T. D. (2023). Studies on antioxidant activities of grape pomace using in vitro, ex vivo, and in vivo models. Journal of Food Measurement and Characterization, 17, 121–128. https://doi.org/10.1007/s11694-022-01608-7 
Yang, J., Wu, B., Kong, J., Liu, F., & Li, H. (2025). Exploring the extraction, antioxidant activities and its stabilities of peanut skins crude proanthocyanidins extract. Scientific Reports, 15, 26274. https://doi.org/10.1038/s41598-025-10934-x 
Zapata, K., Cortes, F. B., & Rojano, B. A. (2013). Polifenoles y actividad antioxidante del fruto de guayaba agria (Psidium araca). Información Tecnológica, 24(5), 103–112.  http://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642013000500012. 
Aba, S. C., Eze, S. C., Ishieze, P. U., Omeje, T. E., & Ugwuoke, K. I. (2018). Controlling Phytophthora blight of cucumber (Cucumis sativus) in a derived savannah using different spray intervals of a registered fungicide. Plant Pathology & Quarantine, 8(2), 122–130. https://doi.org/10.5943/ppq/8/2/ 
Alsayed, A., Alsabei, A., & Arif, M. (2021). Classification of apple tree leaves diseases using deep learning methods. International Journal of Computer Science & Network Security, 21(7), 324-330. https://doi.org/10.22937/IJCSNS.2021.21.7.37 
Ceballos-Chávez, Á. R., Lizárraga-Sánchez, G. J., Leyva-Madrigal, K. Y., Caughey-Espinoza, D. M. M., Chávez-García, L. E., Escoboza, F. A. V., & López-Valenzuela, B. E. (2023). Hospedantes en frutales de importancia económica asociados a patógenos foliares del duraznero (Prunus persica L.). Bioagro, 35(3), 259-270. https://doi.org/10.51372/bioagro353.9 
Khan, A. I., Quadri, S., & Banday, S. (2021). Deep learning for apple diseases: classification and identification. International Journal Of Computational Intelligence Studies, 10(1), 1. https://doi.org/10.1504/ijcistudies.2021.113831
Khan, A. I., Quadri, S., Banday, S., & Shah, J. L. (2022). Deep diagnosis: A real-time apple leaf disease detection system based on deep learning. Computers And Electronics In Agriculture, 198, 107093. https://doi.org/10.1016/j.compag.2022.107093 
Little, T. M. y Hills, F. J. 1989. Métodos estadísticos para la investigación en la agricultura. Ed. trillas 2a edición. México, D. F. 125-143 pp.
Ramírez-Jiménez, G., Alvarado-Gómez, O. G., La Cruz, M. T., Mayo-Hernández, M. Á., Huamán-Pilco, Á. F., & Díaz-Valderrama, J. R. (2025). Characterization and fungicide sensitivity of fungi causing postharvest deterioration in Allium sativum, Nuevo León, Mexico. Revista Mexicana de FitopatologíA(En LíNea)/Revista Mexicana de FitopatologíA, 43(2). https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.2406-2 
Sha, S. S., Wang, Z., Yan, C. C., Hao, H. T., Wang, L., & Feng, H. Z. (2022). Identification of Fungal Species Associated with Apple Canker in Tarim Basin, China. Plant Disease, 107(5), 1284-1298. https://doi.org/10.1094/pdis-09-22-2032-sr 
Tharana-Poonacha, T., Khan, F., Hegde, Y. R., Nithya, S. R., & Ismayil, M. M. S. (2023). Efficacy of fungicides against Rhizoctonia solani (J. G. Kuhn) causing root rot of French bean. Environment and Ecology, 41(3B), 1838–1843. https://doi.org/10.60151/envec/MRVM2315
Udhayakumar, R., S., Usharani and A. Muthukumar.(2019). Pathogenicity variation, morphological and cultural characteristic of Colletotrichum gloeosporioides isolates. Plant Archives 19 (1):425-430. http://www.plantarchives.org/PDF%2019-1/425-430%20(4604).pdf
Arancon, N. Q., J. D. Owens, and C. Converse. (2019). The effects of vermicompost tea on the growth and yield of lettuce and tomato in a non circulating hydroponics system. Journal of Plant Nutrition, 42, 2447-2458. https://doi.org/10.1080/01904167.2019.1655049
Chiquito-Contreras, R. G., Reyes-Pérez, J. J., Troyo-Diéguez, E., Rueda-Puente, E. O., Torres-Rodríguez, J. A. y Murillo-Amador, B. (2018). Crecimiento de plántulas de tomate (Solanum lycopersicum L.) tratadas con humato de vermicompost, (20), 4187-4197. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i20.989
Durán, L. y C. Henríquez. (2007). Caracterización química, física y microbiológica de vermicompostes producidos a partir de cinco sustratos orgánicos. Agronomía Costarricense, 31(1), 41-51. Recuperado de http://www.mag.go.cr/rev
Gopinathan, R. and Prakash, M. (2014). Isolation of Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR) from Vermicompost and effect on growth of Green Gram (Vigna radiata L.). Int.J.Curr.Microbiol.App.Sci, 3(7), 1072-1081. Recuperado de http://www.ijcmas.com/
Kashem, A., Hossain, A. S. and Islam, S. (2015). Comparación del efecto del vermicompost y fertilizantes inorgánicos sobre el crecimiento vegetativo y la producción de frutos de tomate (Solanum lycopersicum L.). Open Journal of Soil Science, 5(2), 53-58. http://dx.doi.org/10.4236/ojss.2015.52006
Lazcano, C., Gómez-Brandon, M. and Jorge, D. (2008). Comparison of the effectiveness of composting and vermicomposting for the biological stabilization of cattle manure. Chemosphere, 72(7), 1013-1019. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2008.04.016
Mantuano-Morales, M. A. y Zambrano-Gavilanes, F. (2023). Efecto de la aplicación de vermicompost en el comportamiento agronómico de diversos cultivos. Biotempo, 20(2), 285-296. http://doi:10.31381/biotempo.v20i2.5742
Moreno, R. A., Gómez, F. L., Cano, R. P., Martínez, C. V., Reyes, C. J. L., Puente, M. J. L. y Rodríguez, D. N. (2008). Genotipos de tomate en mezclas de vermicompost:arena en invernadero. Terra Latinoamericana, 26(2), 103-109. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=57313046002
Olivares-Campos, M. A., Hernández-Rodríguez, A., Vences-Contreras, C., Jáquez-Balderrama, J. L. y Ojeda-Barrios, D. (2012). Lombricomposta y composta de estiércol de ganado vacuno lechero como fertilizantes y mejoradores de suelo. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios, 28(1), 27-37. https://doi.org/10.19136/era.a28n1.30
Reyes, P. J. J., Torres, R. J. A., Murillo, A. B., Herrera, H. M. F., Guridi, I. F., Luna, R. M. A., López, B. R. J. y Real, G. G. E. (2015). Humatos de vermicompost y su efecto en el crecimiento de plántulas de tomate ((Solanum lycopersicum L.). Biotecnia, 17(2), 9-12. https://doi.org/10.18633/bt.v17i2.181
Singh, P. R., Singh, P., Araujo, S. F. A., Ibrahim, H. M. and Sulaiman, O. (2011). Management of urban solid waste: Vermicomposting a sustainable option. Res. Conserv. Recy, 55(7), 719-729. http://dx.doi.org/10.1016/j.resconrec.2011.02.005
Tejeda, M., González, J. L., Hernández, M. T. and García, C. (2008). Agricultural use of leachates obtained from two different vermicomposting processes. Bioresource Technology 99(14): 6228-6232. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2007.12.031
Villegas-Cornelio, V. M. y Laines, C. J. R. (2017). Vermicompostaje: I avances y estrategias en el tratamiento de residuos sólidos orgánicos. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, (8(2), 393-406. https://doi.org/10.29312/remexca.v8i2.59
Barto K. E., Hilker M., Mohney B. K., Weidenhame J. D., Rilling M. C. 2011. The Fungal Fast Lane: Common Mycorrhizal Networks Extend Bioactive Zones of Allelochemicals in Soils. Plos One, 6 (11), 1-7.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0027195
Bhattacharyya M. 2017. Use of marigold (Tagetes sp.) for the succesful control of nematodes in agricultural. The pharma Innovation Journal, 6 (11), 01-03.
Flanagan P. W. 1981. Fungal taxa, physiological groups and biomass: a comparison between ecosystems. In The fungal community. New York: Marcell Dekker.
Gómez R. O., Zavaleta-Mejía E., Gonzalez-Hernandez V., Livera-Munoz, M. y Cárdenas-Soriano, E. 2003. Allelopathy and microclimatic modification of intercropping with marigold on tomato early blight disease development. Field Crops Res, 83, 27–34. https://doi.org/10.1016/S0378-4290(03)00053-4
Weidenhamer J. D., Montgomery T. M., Cipollini D. F., Weston P. A. and Mohney B. K. 2019. Plandensity and rhizosphere chemistry: Does marigold root exudate composition respond to intra-and interspecific competition?. J. Chem. Ecol, 45 (6), 525–533.
Yuebing S., Qixing Z., Yingming X., Lin W. and Xuefeng L. 2011. Phytoremediation for co-contaminated soils of benzo and heavy metals using ornamental plant Tagetes patula. Journal of Hazardous Materials, 186 (2–3), 2075-2082.  https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2010.12.116.
Zhalnina K., Louie K. B., Hao Z., Mansoori N. and Shi S.   2018.  Dynamic root exudate chemistry and microbial substrate preferences drive patterns in rhizosphere microbial community assembly. Nature Microbiology, 3, 470–480.
FAO. (21 de Marzo de 2023). La escasez de agua supone menos agua para la producción agrícola, lo cual, a su vez, se traduce en una menor disponibilidad de alimentos y pone en peligro la seguridad alimentaria y la nutrición. https://www.fao.org/newsroom/detail/water-scarcity-means-less-water-for-agriculture-production-which-in-turn-means-less-food-available-threatening-food-security-and-nutrition/es  
Moya Talens, J. A. (2009). Riego localizado y fertirrigación.Naciones Unidas. (s.f.). Agua. Recuperado de: https://www.un.org/es/global-issues/water  
Martínez Elizondo, R. (1991). Riego localizado: Diseño y evaluación. 1ª ed. 158 p.
Vargas Loyo, A. J. (Noviembre de 2008). Evaluación de la uniformidad de distribución del agua de seis cintas de goteo en condiciones de El Zamorano. Escuela Agrícola Panamericana, El Zamorano. Honduras.
Arduini, I., Pellegrino, E., & Ercoli, L. (2018). Contribution of main culm and tillers to grain yield of durum wheat: Influence of sowing date and plant traits. Italian Journal of Agronomy, 13(3), 235–247. https://doi.org/10.4081/ija.2018.1115
Assefa, A., & Kassaye, M. (2017). Response of bread wheat (Triticum aestivum L.) varieties to different seeding rate for growth, yield and yield components in Kombolcha District, North-Eastern Ethiopia. Journal of Biology, Agriculture and Healthcare, 7(23), 79–91
Cochachi Bautista, M. J. (2021). Comparativo del rendimiento y sus componentes asociados en líneas uniformes de trigo harinero (Triticum aestivum L.) resistentes a roya. Universidad Nacional del Centro del Perú. https://repositorio.uncp.edu.pe/bitstream/handle/20.500.12894/8118/T010_72451337_T.pdf
Dirección General del Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). (2024). Anuario estadístico de la producción agrícola (Cierre de la producción agrícola). Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. Recuperado el 10 de septiembre de 2025, de https://nube.agricultura.gob.mx/cierre_agricola/ .
Elhani, S., Martos, V., Rharrabti, Y., Royo, C., & García del Moral, L. F. (2007). Contribution of main stem and tillers to durum wheat (Triticum turgidum L. var. durum) grain yield under Mediterranean conditions and its relation to agronomic traits. Field Crops Research, 103(1), 25–35. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2007.05.008
Gebeyehu, B. (2020). Review on: Response of bread wheat (Triticum aestivum L.) to seeding rate on yield and yield components. Journal of Current Research in Food Science, 1(1), 60–65
Ishete, T. A., & Tana, T. (2019). Growth, yield component and yield response of durum wheat (Triticum turgidum L. var. durum) to blended NPS fertilizer supplemented with N rates at Arsi Negelle, Central Ethiopia. African Journal of Plant Science, 13(1), 9–20. https://doi.org/10.5897/AJPS2018.1697
Khan, I., Khan, S. U., Khan, K. M., Khan, A., Gurmani, A. R., Ali, S., … Ali, A. (2016). Evaluation of five different wheat (Triticum aestivum L.) genotypes under drought stress conditions at Haripur Valley. International Journal of Biosciences, 8(5), 236–241. https://doi.org/10.12692/ijb/8.5.236-241
Lizárraga Crispín, I. V. (2015). Rendimiento y caracterización agronómica de líneas de trigo de primavera procedentes del CIMMYT-México. Universidad Nacional del Centro del Perú. https://repositorio.uncp.edu.pe/bitstream/handle/20.500.12894/973/LIZARAGA%20CRISPIN,%20IVAN%20VLADIMIR.pdf
Melash, A. A., Bogale, A. A., Mengstu, S. G., Aberra, D. A., Tsegay, A., & Mengistu, D. K. (2023). Sustainable management practices for durum wheat production: Analyzing specific agronomic interventions on productivity, grain micronutrient content, and quality. Heliyon, 9, e18733. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e18733
Morales-Coronado, D., Argentel-Martínez, L., Castro-Espinoza, L., Gutiérrez-Coronado, M. A., Garibaldi-Chávez, J., & Ortiz-Enríquez, J. (2019). Global warming is reducing the tillering capacity and grain yield of wheat in Yaqui Valley, Mexico. Agronomía Colombiana, 37(1), 90–96. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v37n1.75736
Pais, I. P., Moreira, R., Coelho, A. R., Semedo, J. N., Reboredo, F. H., Coutinho, J., Lidon, F. C., Maçãs, B., & Scotti-Campos, P. (2024). Unveiling the impact of growth traits on the yield of bread wheat germplasm subjected to waterlogging. Agriculture, 14(2), 241. https://doi.org/10.3390/agriculture14020241
Pampana, S., Masoni, A., & Arduini, I. (2016). Grain yield of durum wheat as affected by waterlogging at tillering. Cereal Research Communications, 44(4), 706–716. https://doi.org/10.1556/0806.44.2016.026
Ramírez Cortez, N. C. (2022). Evaluación del comportamiento agronómico y calidad tecnológica de trigos (T. aestivum y T. durum) en La Ascensión, Aramberri. Universidad Autónoma de Nuevo León. http://eprints.uanl.mx/25422/1/1080328799.pdf
Ramos Ortiz, J., & Maluquis Cieza, G. (2024). Evaluación del rendimiento y sus componentes de 26 genotipos de trigo (Triticum aestivum L.) en el distrito de Chota, región Cajamarca. Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo.
Shibeshi, S. (2024). Review on the effect of seed rate and improved varieties on grain yield of bread wheat (Triticum aestivum L.) in Ethiopia. Middle East Research Journal of Agriculture and Food Science, 4(6), 202–205. https://doi.org/10.36348/merjafs.2024.v04i06.001
Stanley, J. D., Mehring, G. H., Wiersma, J. J., & Ransom, J. K. (2020). A standardized method for determining tillering capacity of wheat cultivars. American Journal of Plant Sciences, 11(5), 604–625. https://doi.org/10.4236/ajps.2020.115046
Zapata, C., Silva, P., & Acevedo, E. (2004). Comportamiento de isolíneas de altura en relación con el rendimiento y distribución de asimilados en trigo. Agricultura Técnica, 64(2), 148–158. https://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0365-28072004000200003
Dongi E., Mabhegedhe M. and Chikodzi D. 2018. Effects of Dactylopius tomentosus infestation on the morphology of Opuntia fiscus-indica plant species growing in Masvingo Province, Zimbabwe. International Journal of Biodiversity and Conservation, Vol. 10(11); 471-478.
Flores-Hernández, A., B. Murillo-Amador, E. Rueda-Puente, J. Salazar-Torres, J. García-Hernández, y E. Troyo-Dieguez. 2006. Reproducción de cochinilla silvestre Dactylopius opun tiae (Homoptera: Dactylopiidae). Rev. Mex. Biodiv. 77: 97 102.
Palafox-Luna J. A., Rodríguez-Leyva E., Lomeli-Flores J. R., Vigueras-Guzmán A. L y Vanegas-Rico J. M., 2018. Ciclo de vida y fecundidad de Dactylopius opuntiae (Hemiptera: dactylopiidae) en Opuntia ficus-indica (Caryophyllales: Cactaceae). AGROCIENCIA, 52: 103-114. 
SAGARPA, 2023. Gestionó AGRICULTURA mayor superficie de Nopal Forrajero para la Zona Costa de BC. https://www.gob.mx/Agricultura%7/Baja california.
Torres-Ponce R. L. Morales-Corral D., Ballinas-Casarrubias M. L. y Nevárez Moorillón G. V., 2015. El nopal: planta del semidesierto con aplicaciones en farmacia, alimentos y nutrición animal. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas Vol.6 (5); 1129-1142.
El-Aalaoui, M., R. Bouharroud, M. Sbaghi, M. El Bouhssini and L. Hilali. 2020. Seasonal biology of Dactylopius opuntiae (Hemiptera: Dactylopiidae) on Opuntia ficus-indica (Caryophyllales: Cactaceae) under field and semi field conditions. International Journal of Sciences and Research, 76(1/1):259-271.
Arcos, M. L., Matu, J. E. P., & Cortez, M. A. M. (2012). Respuesta del chile habanero (Capsicum chinense L. Jacq) al suministro de abono orgánico en Tabasco, México. Revista Científica UDO Agrícola, 12(2), 307-312. https://dialnet.unirioja.es/descarga/articulo/4688425.pdf
Escalante Y.M. (2000). Calidad nutricional de tomate bajo manejo orgánico, Tesis de Licenciatura, UAS.
Eshbaugh, W. H. (1980). The taxonomy of the genus Capsicum (Solanaceae). Phytologia, 47, 153-166. https://doi.org/10.5962/bhl.part.4455
Hernández-Tapia A., Ardé-Rivero L., Corlay-Chee L y Cruz-Rodriguez J.A. (2015). Efecto de tres abonos orgánicos: Lombricomposta, Bocashi y Tierra de corral en un cultivo intercalado de jitomate (Solanum lycopersicon) y pepino (Cucumis saltivus) bajo invernadero en el ejido el Limón, Tepalcingo, Morelos, México.
Hunziker A.T. (1979). South America Solanaceae: a synoptic survey. In Hawkes J, Lerster R.N., skelder A.D. The biology anhd Taxonomy of the solanaceae. Academic Press, London p. 49-85     
López-González L. y Mijangos-Leal M. A. (2001). La agricultura orgánica, una aliada económica para los pequeños productores. En: Rojas-Canales, M del C. López-Gonzáles L., Cabrera-Torres J. y Pons-Gutiérrez, J. M. La cultura de la tierra. Conceptos y Experiencias para la Agricultura Sustentable. Secretaría del Medio ambiente y Recursos Naturales, Secretaria de Agricultura Ganadería, Desarrollo Rural Pesca y Alimentación. México, D.F. Pp. 160-182.
Lewu F.B., Grierson D.S.y Afoloyan A.J. (2007). Morphological diversity among accessions of Pelargonium sidoidesDC. In the Eastern Cape, South Africa. Genetic Resources and Crop Evolution, 54: 1-6. https://doi.org/10.1007/s10722-006-9000-0
Nooryazdan H.; H. Serieys  Baciliéri R. y David J. (2010). «Structure of wild annual sunflower (Heliantuhus annus L.) accesions based on agromorphological traits. Genetic. Resource and. Crop Evolution, 57: 27-39. DOI: 10.1007/s10722-009-9448-9
PICKERSGILL, B. (1984). Migrations of chili peppers, Capsicum spp., in the Americas, pp. 105-123. In: Pre-Columbian Plant Migration. Papers of the Peabody Museum of Archeology and Ethnology. vol. 6. Stone, D (ed). Harvard University Press, Cambridge, MA. 
SAS Institute. (1995). Statistical and Graphical Guide” SAS Institute Inc. North Caroline.
Aguiar, S., Estrella, M. E., &amp; Cabadiana, H. U. (2022). Residuos agroindustriales: su impacto, manejo y aprovechamiento. Axioma, (27), 5-11.
CONADESUCA. 2025. Comité Nacional para el Desarrollo sustentable de la caña de azúcar. Fecha de actualización 07 de abril del 2025.
De la Torre López, L., Cortés, M. E. T., &amp; Espino, X. M. (2021). Desarrollo sustentable y aprovechamiento del Residuo de la Caña de Azúcar. Revista Multidisciplinaria de Avances de investigación, 7(1), 12-26.
Salgado, & cols, y. (2013). Caña de azúcar: producción sustentable. México: Colegio de Postgraduados.
Murjani, B. O., Suryavanshi, A. A., Dhembare, S. B., Patil, I. P., Patil, P. T., Sonawane, H. P., & Pandit, A. B. (2023). Approaches and technologies for preservation of sugarcane juice: A review. Journal of Food Engineering and Technology, 12(2), 35-47.
Singh S, Gaikwad KK, Omre PK, Lee YS. 2016. Process development for stabilization of sugarcane juice using response surface methodology. Journal of Food Measurement and Characterization. 10 (4):727–737.
Cabrera-Verdesoto, C. A., Salvatierra-Pilozo, D. M., & Navarro-Saltos, G. E. (2024). Tendencias en la aplicación de la inteligencia artificial en la agricultura de precisión mediante una revisión sistemática. Innova Science Journal, 2(3).
Esperbent, C. (2016). Robots: la próxima revolución del campo: En un futuro cercano, la incorporación de la inteligencia artificial a lo agropecuario permitirá tomar mejores decisiones y optimizar aún más las prácticas agrícolas. RIA. Revista de investigaciones agropecuarias, 42(1), 8–13.
Hernández-Ávila, J., Salas-Rodríguez, F., Díaz-Viquez, A., González-Huerta, A. & Serrato-Cuevas, R. (2022). Revista mexicana ciencias agrícolas, 13(3): 421-432. https://doi.org/10.29312/remexca.v13i3.2780
Instituto Nacional de Estadística y Geografía (2022). Censo Agropecuario (CA) 2022. Blog del INEGI. https://www.inegi.org.mx/programas/ca/2022/#Tabulados
Jin, J.,Sang, Y., He, Z. & Jin, X. & Wang, S. (2021). Designing an intelligent monitoring system for corn seeding by machine visión and Genetic Algorithm-optimized back propagation algorithm under precisión positioning. Plos One 16(7): e0254544. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0254544
Kitchenham, B. (2004). Procedures for performing systematic reviews [Technical report]. Keele. University.  https://www.inf.ufsc.br/~aldo.vw/kitchenham.pdf
López-Gómez, J. A., & Van-Loon, J. (2018). Evaluación agrotécnica de implementos manuales para la siembra de maíz. Revista Mexicana de Ciencias Agricolas, 21, 4258-4269. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i21.1524
López-Morales, J. (2025). El análisis FODA como herramienta estratégica en la educación: una revisión sistemática. Huella Científica, 2(2), 99-118. Recuperado de: https://huellacientifica.villahermosa.tecnm.mx/huella_cientifica/article/view/32
Negrete, J. C. (2020). Analysis of the current situation of two wheels tractors in Mexico. Hoticulture international journal. 4(1): 28-33. Doi: 10.15406/hij.2020.04.00152
Negrete, J. C. (2023). Trends and perspectives of mechanization and agricultural machinery in Mexico for the 21st century. Journal of Agricultural & Crop Science, 2,01-07. Doi: 10.31872/2019/JACS-100105
Ponce, A. M., Murray, G. N., Ixchel, T., Hernández, M., Carol, O., & Rodríguez, H. (2022). Agricultura y cambio climático. Recuperado de https://www.pincc.unam.mx/wp-content/uploads/2025/01/agricultura-cambio-climatico-mexico.pdf
Salas-Gutiérrez, J. C., Mora-Flores, J. S., García-Salazar, J. A & Garduño-García, A. (2024). Factors that impact the market of agricultural tractors in Mexico. Agro Productividad. 17(9):11-19. https://doi.org/10.32854/agrop.v17i9.2709
Sánchez-Hernández, M. A., Ayala-Garay, A. V., Cervantes-Osornio, R., Garay-Hernández, M., De la O-Olán, M., Martínez-Trejo, G., & Velázquez-López, N. (2014). Diagnóstico de la maquinaria agrícola en Amecameca y Texcoco, Estado de México. Agricultura, sociedad y desarrollo, 11(4), 499–516. 
Santos-Valle, S. & Kienzle, J. 2021. Agricultura 4.0: Robótica agrícola y equipos automatizados para la producción agrícola sostenible. Gestión integrada de cultivos. N. 24, Roma, FAO. 
Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural (SADER). (2024). Emplea Agricultura robots ‘a todo terreno’ para automatizar los procesos de siembra. Gobierno de México. Recuperado de https://www.gob.mx/agricultura/articulos/emplea-agricultura-robots-a-todo-terreno-para-automatizar-los-procesos-de-siembra
Sun, J., Zhang, Y., Zhang, Y., Li, P. & Guifa, T. (2022). Precision seeding compensation and positioning based on multisensors. Sensors. 22(19): 7728.  https://doi.org/10.3390/s22197228
Terrones-Cordero, A., Martínez-Damián, M. A., & Sánchez-Torres, Y. (2020). Análisis dual del comportamiento del sector primario en México 1980-2020. Revista Mexicana De Ciencias Agrícolas, 11(5), 1179–1187. doi: https://doi.org/10.29312/remexca.v11i5.1819
Torres-Sandoval, J., Romantchik-Kriuchkova, E., López-Cruz, I. L., López-Canteñs, G. de J., & O-Olán, M. de la. (2020). Pruebas de una sembradora-fertilizadora con un sistema mecatrónico adaptado para el control de los dosificadores. Revista fitotecnia mexicana, 43(4a), 533–541. https://doi.org/10.35196/rfm.2020.4-a.533
Van Loon, J., Martínez Pérez , G., Patiño Espejel, J. E ., y López Gómez , J. A . (2024). Guía para la Mecanización Agrícola Sostenible: Maquinaria a la Medida y climáticamente inteligente. Centro Internacional de Mejoramiento de Maíz y Trigo (CIMMYT). Texcoco de Mora, México.
Escalera-Ordaz A. K., Guillén-Andrade H., Lara-Chávez M. B. N., Lemus-Flores C., Rodríguez-Carpena J. G., & Valdivia-Bernal R. 2019. Caracterización de variedades cultivadas de Capsicum pubescens en Michoacán, México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 23: 239-251. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i23.2024
Leyva-Ovalle O.R., Andrés-Meza P., Del valle-Hernández D., Meneses-Márquez L., Murguía-González J, Galindo-Tovar M.E., López-Sánchez H., Serna-Lagunes R., Del Rosario-Arellano L., Lee-Espinoza H.E., Sierra-Macias M., Espinoza-Calderón A. 2018. Morphological characterization of manzano hot pepper (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.) landraces in the central region of Veracruz state, México. Revista Bio Ciencias 5:1-11. https://revistabiociencias.uan.edu.mx/index.php/BIOCIENCIAS/article/view/388/642#toc
Lewu F.B., Grierson D.S.y Afoloyan A.J. 2007. Morphological diversity among accessions of Pelargonium sidoidesDC. In the Eastern Cape, South Africa. Genetic Resources and Crop Evolution, 54: 1-6. https://doi.org/10.1007/s10722-006-9000-0
Loaiza-Figueroa F., Ritland K., Cancino J. A. L., & Tanksley S. D. 1989. Patterns of genetic variation of the genusCapsicum (Solanaceae) in Mexico. Plant Systematics And Evolution, 165(3-4), 159-188. https://doi.org/10.1007/bf00936000|
Nei, M. 1972. Genetic Distance between Populations. The American Naturalist, 106(949), 283-292. https://doi.org/10.1086/282771 
Nooryazdan H.; H. Serieys  Baciliéri R. y David J. 2010. «Structure of wild annual sunflower (Heliantuhus annus L.) accesions based on agromorphological traits. Genetic. Resource and. Crop Evolution, 57: 27-39. DOI: 10.1007/s10722-009-9448-9
Pérez G., M. y R. Castro B. 1998. Guía técnica para la producción intensiva de chile manzano. Boletín de Divulgación Núm. 1. Programa Nacional de Investigación en Olericultura. Departamento de Fitotécnia. Universidad Autónoma de Chapingo, México. 17 p.
Pickersgill B., Heiser C., & McNeill J. 1979. Numerical taxonomic studies on variation and domestication in some species of capsicum. Linnean Society Symposium Series, No.7. Academic Press, New York. https://worldveg.tind.io/record/16909
Zeven, A. 1998. A review of definitions and classifications. Euphytica,104(2):127-139. https://doi.org/10.1023/a:1018683119237 
Cabot, M. I., Lado, J., & Sanjuán, N. (2023). Multi-sea son environmental life cycle assessment of lemons: A case study in south Uruguay. Journal of Environmental Management, 326, 116719. https://doi.org/10.1016/j.jen vman.2022.116719
Djoko Kouam, I., Moungang, S., Koulagna, H. I., Ntsoli, G. P., Titti, R. W., & Yaouba, A. (2024). Influence of organic and mineral fertilizers and a foliar biostimulant on the yield and nutritional quality of strawberries. Biochemi cal Systematics and Ecology, 117, 104917. 
https://doi. org/10.1016/j.bse.2024.104917
Hussein, A. S., Abeed, A. H. A., Usman, A. R. A., & Abou Zaid, E. A. A. (2024). Conventional vs. nano-micronu trients as foliar fertilization for enhancing the quality and nutritional status of pomegranate fruits. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 23(1), 112-122. https://doi.org/10.1016/j.jssas.2023.09.008
Martínez de la C, J., H. Rojas P., A. Gutiérrez D., E. Olivares S., y J. Aranda R. (2012). Effect of organic and synthetic fertilization in grapefruit (Citrus paradasi Macf.) yield and juice quality. Journal of Horticulture and Forestry. Vol. 4(3), pp. 61-64. 22 February, 2012.  https://academicjournals.org/article/article1379498889_de%20la%20Cerda%20et%20al.pdf
Olivares, S.E. (2012). Diseño de experimentos FAUANL. Versión 1.0. Facultad de Agronomía de la Universidad Autónoma de Nuevo León, México.
Polo-Murcia, S. M., Chaali, N., Jaramillo-Barrios, C. I., Oua zaa, S., Polo, V. J., & Calderon Carvajal, J. E. (2025). An ecological, environmental, and economic indica tors-based approach towards enhancing sustainability in water and nutrient use for passion fruit cultivation in Colombia. Environmental and Sustainability Indicators, 26, 100602. https://doi.org/10.1016/j.indic.2025.100602
Zhang, B., Yan, S., Li, B., Wu, S., Feng, H., Gao, X., Song, X., & Siddique, K. H. M. (2023). Combining organic and chemical fertilizer plus water-saving system reduces en vironmental impacts and improves apple yield in rainfed apple orchards. Agricultural Water Management, 288, 108482. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2023.108482
 
Bayer. 2018. Aprovecha al máximo la productividad de la primavera sembrando cebollines. Disponible en: https://www.vegetables.bayer.com/mx/es-mx/recursos/noticias/aprovecha-al-maximo-la-productividad-de-la-primavera-sembrando-cebollines.html 
Bayer. 2025. Ficha técnica variedad Green Banner .Disponible en: https://www.vegetables.bayer.com/mx/es-mx/productos/cebolla/details.html/onion_green_banner_mexico_seminis_all_grehighomopeprosma_all.html 
Domínguez, O. G. P., Pesantes, K. E. B., Martínez, M. M., & Gaitén, Y. G. (2019). Estudio químico y evaluación biológica del extracto etanólico de Allium schoenoprasum L. Regel & Tiling (Cebollín). Revista Cubana de Farmacia, 52(1).
FAO. 2022. Alternativas para el manejo sostenible de la fertilización de suelos y nutrición vegetal. Disponible en: https://www.fao.org/3/cc0964es/cc0964es.pdf 
Hidalgo, R., Flores, B., Ferrer, J., & Agraz, C. S. (2023). EFECTO DE LA FERTILIZACIÓN SOBRE EL DESARROLLO DEL CULTIVO DE CEBOLLÍN (AlliumSchoenoprasum) EN UN PATIO PRODUCTIVO. Revista UNERG AGRO CIENTIFICA, 4(2), 7-7.Yara. 2025a. Ficha técnica Yara MilaStar. Dsiponible en: https://www.yara.com.mx/nutricion-vegetal/productos/yaramila/yaramila-star-zn/
Tribuna Económica. 2025. Cebollín, principal hortaliza cultivado en el valle de Mexicali https://tribunaeconomica.com.mx/publicaciones/seccion/economia/cebollin-principal-hortaliza-cultivada-en-el-valle-de-mexicali/
Yara. 2025b. Ficha técnica Yara Mila Tristar. Dsiponible en: https://www.yara.com.mx/nutricion-vegetal/productos/yaramila/yaramila-tristar
Balusamy, S.R., Joshi, A.S., Perumalsamy, H., Mijakovic, I., & Singh, P. (2023). Advancing sustainable agriculture: a critical review of smart and eco-friendly nanomaterial applications. Journal of nanobiotechnology. 21(1): 372. https://doi.org/10.1186/s12951-023-02135-3.
Geremew, A., Carson, L., Woldesenbet, S., Wang, H., Reeves, S., Brooks, N. Jr., Saganti, P., Weerasooriya, A., & Peace, E. (2023). Effect of zinc oxide nanoparticles synthesized from Carya illinoinensis leaf extract on growth and antioxidant properties of mustard (Brassica juncea). Frontier in Plant Science. 23(14): 1108186. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1108186.
Gío-Trujillo, J. A., & Cámara-Romero, J.L. (2023). Efecto repelente de tres extractos vegetales sobre plagas del cultivo de Capsicum Chinense. Ecosistemas y recursos agropecuarios, 10: e3614. https://doi.org/10.19136/era.a10niii.3614.
Jonapá-Hernández, F., Gutiérrez-Miceli, F., Santos-Espinosa, A., Ruíz-Lau, N., Ruíz-Valdiviezo, V., Valdez-Salas, B., & González-Mendoza, D. (2020). Foliar application of green nanoparticles in Annona muricata L. plants and their effects in physiological and biochemical parameters. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 28: 101751. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101751.
Muñoz-Ramírez, L.S., Peña-Yam, L.P., Álvarez-Gil, M.A., Iglesias-Andreu, L.G., Avilés-Viñas, S.A., Canto-Flick, A., Guzmán-Antonio, A., & Santana-Buzzy, N. (2020) Selection of habanero pepper F1 hybrids (Capsicum chinense Jacq.) at the Yucatan peninsula, Mexico with a high potential for different markets. Agriculture. 10: 478. https://doi.org/10.3390/agriculture10100478.
Pappalardo, I., Santarsiero, A., De Luca, M., Acquavia, M. A., Todisco, S., Caddeo, C., Bianco, G., Infantino, V., Martelli, G., & Vassallo, A. (2021). Exploiting the anti–inflammatory potential of white Capsicum extract by the nanoformulation in phospholipid vesicles. Antioxidants (Basel). 10(11): 1683. https://doi.org/10.3390/antiox10111683.
Santos-Espinoza, A.M., González-Mendoza, D., Ruiz-Valdiviezo, V.M., Luján-Hidalgo, M.C., Jonapa-Hernández, F., Valdez-Salas, B., & Gutiérrez-Miceli, F.A. (2021). Changes in the physiological and biochemical state of peanut plants (Arachis hypogaea L.) induced by exposure to green metallic nanoparticles. International Journal of Phytoremediation. 23(7), 747-754. https://doi.org/10.1080/15226514.2020.1856037.
Sehnal, K., Hosnedlova, B., Docekalova, M., Stankova, M., Uhlirova, D., Tothova, Z., Kepinska, M., et al., (2019). An assessment of the effect of green synthesized silver nanoparticles using sage leaves (Salvia officinalis L.) on germinated plants of maize (Zea mays L.). Nanomaterials (Basel). 9(11):1550. https://doi.org/10.3390/nano9111550.
Shafqat, U., Hussain, S., Shahzad, T., Shahid, M., & Mohamood, F. (2023). Elucidating the phytotoxicity thresholds of varios biosynthesized nanoparticle on physical and biochemical attributes of cotton. Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 10:30. https://doi.org/10.1186/s40538-023-00402-x.
Singh, H., Desimone, M.F., Pandya, S., Jasani, S., George, N., Adnan, M., Aldarhami, A., et al., (2023). Revisiting the green synthesis of nanoparticles: uncovering influences of plant extracts as reducing agents for enhanced synthesis efficiency and its biomedical applications. International Journal of Nanomedicine. 18, 4727–4750. https://doi.org/10.2147/IJN.S419369.
Zhang, H., Chen, S., Jia, X., Huang, Y., Ji, R., & Zhao, L. (2021). Comparation of the phytotoxicity between chemically and green synthesized silver nanoparticles. Science of the Total Environment. 752: 142264. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.142264.
Abbott, W.S. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. J. Econ. Entomol, 18, 265-267.
Abou-Setta, M. M. and Childers, C. C. (1987). A modified leaf arena technique for rearing Phytoseiid or Tetranychid mite for biological studies. Florida Entomologist. 70: 245-248.
Bowling, R., M. J. Brewer, S. Biles, and J. Gordy. (2015). Occurrence of sugarcane aphid in the United States and México with reference to occurrence in 2013 and 2014. Texas Plant Protection Conference, Bryan, TX. (http://ccag.tamu.edu/sorg.hum-insect-pests/).
CABI. (2014). Crops Protection Compendium. Data Sheet for: M. sacchari (Zehnter): http://www.cabi.org/isc/datashet/26757. 
Ronaix. (2014). Pruebas de eficacia y vademécum de Insecta Pro®, para el manejo de Bemisia tabaci Gennadius, en hortalizas. León. Nicaragua. Pág. 62.
Peralta-Sánchez, M. G., Trejo-Téllez, L. I., Gómez-Merino, F. C., Rodríguez-Mendoza, M. N., Serrato-Cruz, M. A. y García-Albarado, J. C. (2014). Metabolitos secundarios y clorofilas en cempasúchil en respuesta a estrés salino. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 9: 1589-1599. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i9.1050.
USDA, (Departamento de Agricultura de Estados Unidos) 2024. Producción Mundial de Sorgo 2023/2024.Pág. 1.  http://www.produccionagricolamundial.com/cultivos/sorgo.aspx.
SENASICA. (2014). Pulgón amarillo Melanaphis sacchari (Zehntner). Ficha Técnica No. 4. SAGARPA. https://www.cesavep.org/descargas/SORGO/FichaT%C3%A9cnicaNo.43Pulgonamarillo_25junio.pdf.
SIAP. (2024). Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. https://nube.siap.gob.mx/avance_agricola/.
CIMMYT (20016). Centro Internacional de Mejoramiento de Maíz y Trigo. Triticale: opción forrajera para la ganadería en México – IDP. (s. f.). https://idp.cimmyt.org/triticale-opcion-forrajera-para-la-ganaderia-en-mexico
Hernández-Clemente, R., Hornero, A. (2021). Monitoreo y evaluación de la desertificación con teledetección. Ecosistemas 30(3): 2240. https://doi.org/10.7818/ECOS.2240.
JMP ®, Version 17.0.0. SAS Institute Inc., Cary, NC, 2023.
Lopes, Marta y Reynolds, Matthew. (2012). Stay-green in spring wheat can be determined by spectral reflectance measurements (normalized difference vegetation index) independently from phenology. Journal of experimental botany. 63. 3789-98. 10.1093/jxb/ers071.
Panek, E., Gozdowski, D., Stępień, M., Samborski, S., Ruciński, D. y Buszke, B. (2020). Relaciones intra campo entre índices de vegetación derivados por satélite, rendimiento de grano y número de espigas de trigo de invierno y triticale. Agronomía, 10 (11), 1842. https://doi.org/10.3390/agronomy10111842
Pask, AGD., Pietragalla, J., Mullan, DM., Chavez-Dulanto PN. y Reynolds, MP. (Eds.) (2013) Fitomejoramiento Fisiológico II: Una guía del campo para la caracterización Fenotípica de trigo. México, DF.: CIMMYT.
SADER (2023). Secretaria de Agricultura y Desarrollo Rural. https://www.gob.mx/agricultura%7Cbajacalifornia/articulos/carne-principal-producto-pecuario-de-baja-california-en-el-2023.
Velasco López, José Luis, Soto Ortiz, Roberto, Ail-Catzim, Carlos Enrique, Grimaldo Juárez, Onécimo, Avilés Marín, Silvia Mónica, & Lozano del Río, Alejandro Javier. (2020). Rendimiento de biomasa y grano en variedades de triticale en el valle de Mexicali. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 11(5), 1097-1109. Epub 03 de octubre de 2021.https://doi.org/10.29312/remexca.v11i5.2293.
Yang Y, Tilman D, Jin Z, Smith P, Barrett CB, Zhu YG, Burney J, D’Odorico P, Fantke P, Fargione J, Finlay JC, Rulli MC.(2024).Climate change exacerbates the environmental impacts of agriculture. Science. Sep. 6;385(6713): eadn3747. doi: 10.1126/science.adn3747. Epub 2024 Sep 6. PMID: 39236181.
Panek, E., & Gozdowski, D. (2020). Analysis of relationship between cereal yield and NDVI for selected regions of Central Europe based on MODIS satellite data. Remote Sensing Applications: Society and Environment, 17, 100286. https://doi.org/10.1016/j.rsase.2019.100286
Alfaro-Valle, E., A.G. Martínez-Hernández, G. Otero-Colina and J. Lara-Reyna. (2022). High susceptibility of Tetranychus merganser (Acari: Tetranychidae), an emergent pest of the tropical crop Carica papaya, towards Metarhizium anisopliae s.l. and Beauveria bassiana strains. PeerJ 10:1-23. https://peerj.com/articles/14064/ 
Ali, F.S., Afifi, A.M., El-Saiedy E. M. A, Ahmed M. M. (2015). Effect of phytochemical components, morphological and histological leaf structure of five tomato hybrids on Tetranychus urticae Koch infestation. Acarines. 9:23–30.
Alizade , M., M. Hosseini , M. M. Awal,  M. Goldani, A. Hosseini. (2016). Effects of nitrogen fertilization on population growth of two-spotted spider mite. Systematic and Applied Acarology 21: 947-956. http://doi.org/10.11158/saa.21.7.8 
Comisión Nacional del Agua (CONAGUA). (2025). Servicio Meteorológico Nacional-SNM. SMN General. Fecha de consulta: Julio 2025.  
Dirección General del Servicio de Información y Pesquera (DGSIAP). (2024). Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. Fecha de consulta: Junio, 2025. 
Heinz-Castro R.T.Q, R. Arredondo-Valdés, S. Ordaz-Silva, H. Méndez-Cortés, A. Hernández-Juárez and J.C. Chacón-Hernández. (2021). Bioacaricidal Potential of Moringa oleifera Ethanol Extract for Tetranychus merganser Boudreaux (Acari: Tetranychidae) Control. Plants-Basel 10:1034.
Hernández-Meléndez, P.E., Chacón-Hernández, J.C., Ramírez-Barrón, S.N., Rocandio-Rodríguez, M., Mora-Olivo, A and Villagómez-González, K.F. (2025). New Record of Tetranychus merganser (Acari: Tetranychidae) on Oxalis curniculata (Oxalidaceae) in Northeastern Mexico. Journal of Entomological Science. En prensa.  
Instituto Nacional de Estadística y Geografía (INEGI). (2022).CENSO AGROPECUARIO 2022 RESULTADOS OPORTUNOS DEL ESTADO DE TAMAULIPAS. Fecha de consulta: Julio, 2025.
Islam, M.T., Jahan, M., Gotoh, T., y Ullah, M.S. (2017). Host-dependent life history and life table parameters of Tetranychus truncatus (Acari:Tetranychidae). Systematic and Applied Acarology, 22(12), 2068–2082. https://doi.org/10.11158/saa.22.12.4 
Karley, A.J., Mitchell1, C., Brookes, C., McNicol, J., O’Neill, T., Roberts, H., Graham, J and Johnson, S.N. (2016). Exploiting physical defence traits for crop protection: Leaf trichomes of Rubus idaeus have deterrent effects on spider mites but not aphids. Ann of Applied Biology,168, 159–172.
Lima-Espíndola, J., y Vanegas-Rico, J. (2017). Damage caused by Tetranychus Merganser Bondreaux (Acari: Tetranychidae) on Nopal Verdura Opuntia Ficus-Indica (L.) Miller during winter. Journal of Entomological and Acarological Research 49:6281. https://doi.org/10.4081/jear.2017.6281 
Maia, A.H.N., Luiz and A.J.B., Campanhola, C. (2000). Statistical influence on associated fertility life table parameters using jackknife technique: Computational aspects. Journal of Economic Entomology. 93, 511–518.
Migeon, A y Dorkeld, F. (2024). Spider Mites Web: una base de datos complete para los Tetranychidae. Available from https://www1.montpellier.inrae.fr/CBGP/spmweb. Fecha de consulta: septiembre de 2024.
Puspitarini, R.D., Fernando, I., Rachmawati, R., Hadi, M. S., Rizali, A. (2021). Host plant variability affects the development and reproduction of Tetranychus urticae. International Journal of Acarology 47: 381-386. https://doi.org/10.1080/01647954.2021.1915377
R Core Team (2025). R: A Language and Environment for Statistical Computing_. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.  https://www.R-project.org/. Fecha de consulta: Julio, 2025.
Reyes-Pérez, N., J. Villanueva J, M. De la cruz V, H. Cabrera M y G. Otero C. (2013). Parámetros poblacionales de Tetranychus merganser Boudeaux (Acari:Tetranychidae) en papayo (C. papaya L.) a diferentes temperaturas. México. Agrociencia 47:147-157.
Sá-Argolo,P. (2012). Gestión integrada de la araña roja Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae): optimización de su control biológico en clementinos. [Tesis Doctoral, Universidad Politécnica de Valencia]. 140 p.
Samantha S., Karmakar K., y Ueckermann, E.A. (2024). New records and re-description of Tetranychus merganser Boudreaux,1954 and Tetranychus megauncinatus Feres and Flechtmann, 1986 (Acari: Tetranychidae) from West Bengal, India. Records of the Zoological Survey of India,124(1),25-32.
Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural-Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera-Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SADER-SIAP). (2024). Panorama Agroalimentario: La ruta de la transformación agroalimentaria 2018-2024. México. 210 p.
Segura-Martínez, M.T.d.J., Ordaz-Silva, S.; Hernández-Juárez, A., Heinz-Castro, R.T.Q., Mora Ravelo, S.G and Chacón-Hernández, J.C. (2023). Life Table Parameters of Tetranychus merganser Boudreaux (Acari: Tetranychidae) on Five Host Plants. Insects, 14, 473. https:// doi.org/10.3390/insects14050473
Treviño-Barbosa, G.; Ordaz-Silva, S.; Gaona-García, G.; Hernández-Juárez, A.; Mora-Ravelo, S.G.; Chacón Hernández, J.C. (2022) The resistance of seven host plants to Tetranychus merganser Boudreaux (Acari: Tetranychidae). Insects, 13, 167. https://doi.org/10.3390/insects13020167
Ullah, M.S., D. Morilya, M. H.Badii, G. Nachman y T. Gotoh. (2011). A comparative study of development and demographic parameters of Thetranychus merganser and Tetranychus kanzawai (Acari: Tetranychidae) at different temeratures. Experimental and Applied Acarology 54:1-19. https://doi.org/10.1007/s10493-010-9420-6
Vásquez C., O., Aponte, J., Morales, M.E., Sanabria, G. García. (2008). Biological studies of Oligonychus punicae (Acari: Tetranychidae) on grapevine cultivars. Experimental and Applied Acarology 45:59–69. https://doi.org/10.1007/s10493-008-9154-x.
Wermelinger, B., J.J. Oertli, J. Baumgäirtner. (1991). Environmental factors affecting the life-tables of Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). III. Host-plant nutrition. Experimental and Applied Acarology 12: 259-274. https://doi.org/10.1007/bf0119347

Carrito de compra